نوع مقاله : مقاله پژوهشی
نویسندگان
1 دانشجوی دکتری/دانشگاه تهران
2 عضو هیات علمی دانشگاه تهران
3 رییس آزمایشگاه هیدرومتالورژی، مجتمع مس سرچشمه
چکیده
چکیده
یکی از راهکارهای افزایش راندمان عملیات فروشویی فلزات از کانی های سولفیدی موجود در معادن فلزی، استفاده از گونه-های کارامد باکتریهای اکسید کننده گوگردی میباشد. بنابرین هدف از این پژوهش، جداسازی و شناسایی باکتریهای اکسید کننده گوگرد از خاک های معدن مس سرچشمه کرمان و بررسی عملکرد آنها در اکسایش گوگرد بوده است. بعد از غنیسازی نمونهها، خالصسازی گردیدند و سپس جدایهها بر اساس خصوصیات ریختشناسی و روشهای فیلوژنیک، شناسایی شدند. بر اساس نتایج، 3 سویه اکسید کننده گوگرد متعلق به جنسهای Acidithiobacillus sp و Sulfobacillus sp ، جداسازی و شناسایی شدند. از این میان، سویه 184 با 95 درصد شباهت به Acidithiobacillus ferridurans ، به علت سرعت رشد بالاتر (تغییر 2 واحد pH و mg S/L 385 در طی 2 هفته) در محیط پایه معدنی حاوی گوگرد، به عنوان سویه برتر انتخاب شد که میتواند به عنوان سویهای کاربردی در فروشویی زیستی فلز مس مورد استفاده قرار گیرد.
واژههای کلیدی: خاک، باکتری اکسید کننده گوگرد، Thiobacillus
کلیدواژهها
موضوعات
عنوان مقاله [English]
Operational evaluation of sulfur oxidizing bacteria yield isolated from copper mine soil and their molecular identification based on 16S rRNA sequence
چکیده [English]
Abstract
One ways to increase the operational efficiency of leaching metals from sulfide minerals is using efficient species of sulfur oxidizing bacteria in metal mining. Thus, the aim of this study was to isolate and identify sulfur oxidizing bacteria from soils of Sarcheshmeh copper mine (Kerman, south of Iran) and to survey their operation in sulfur oxidation. After enrichment, samples were purified and then isolates were identified based on their morphological characteristics and phylogenic techniques. Subsequently, three sulfur-oxidizing strains which belonged to Acidithiobacillus sp and Sulfobacillus sp were isolated and identified. Of these three, strain 184, with 95% similarity to Acidithiobacillus ferridurans was selected as the superior strain due to higher growth rate (change of 2 value pH and 385 mg S/L during 2 weeks) in the synthetic mineral medium containing sulfur which can now be used as an applicable strain in bioleaching of copper metal.
Keywords: Soil, Sulfur Oxidizing Bacteria, Thiobacillus
کلیدواژهها [English]
ارزیابی عملکرد باکتریهای اکسید کننده گوگردی جدا سازی شده از خاک معدن مس و شناسایی مولکولی آنها بر اساس توالی 16S rRNA
مهدی صادقی پور مروی1، احمد علی پوربابایی1*، حسینعلی علیخانی1، احمد حیدری1 و زهرا منافی2
1 کرج، دانشگاه تهران، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، گروه علومو مهندسی خاک
2 کرمان، سرچشمه، شرکت ملی صنایع مس ایران، مجتمع مس سرچشمه، آزمایشگاه هیدرومتالورژی
تاریخ دریافت: 12/12/94 تاریخ پذیرش: 21/4/95
چکیده
یکی از راهکارهای افزایش راندمان عملیات فروشویی فلزات از کانیهای سولفیدی موجود در معادن فلزی، استفاده از گونههای کارآمد باکتریهای اکسید کننده گوگردی میباشد. بنابرین هدف از این پژوهش، جداسازی و شناسایی باکتریهای اکسید کننده گوگرد از خاکهای معدن مس سرچشمه کرمان و بررسی عملکرد آنها در اکسایش گوگرد بوده است. بعد از غنیسازی نمونهها خالصسازی گردیدند و سپس جدایهها بر اساس خصوصیات ریختشناسی و روشهای فیلوژنیک شناسایی شدند. بر اساس نتایج، 3 سویه اکسید کننده گوگرد متعلق به جنسهای Acidithiobacillus sp و Sulfobacillus sp ، جداسازی و شناسایی شدند. از این میان، سویه 184 با 95 درصد شباهت بهAcidithiobacillus ferridurans ، به علت سرعت رشد بالاتر (تغییر 2 واحد pH و mg S/L 385 در طی 2 هفته) در محیط پایه معدنی حاوی گوگرد به عنوان سویه برتر انتخاب شد که میتواند به عنوان سویهای کاربردی در فروشویی زیستی فلز مس مورد استفاده قرار گیرد.
واژههای کلیدی: خاک، باکتری اکسید کننده گوگرد، Thiobacillus
* نویسنده مسئول، تلفن: 02632231787، پست الکترونیکی: pourbabaei@ut.ac.ir
مقدمه
گوگرد دهمین عنصر موجود در پوسته زمین است که در ساختار اسید آمینه به صورت گروه سولفیدریل و پل دی سولفیدی، در اقیانوسها به صورت سولفات، در جو زمین به صورت گاز اکسید گوگرد و در سنگ و خاک به صورت کانی سولفیدی وجود دارد (7 و 12). روشهای مرسوم استخراج فلزات از معادن فلزی، مبتنی بر اعمال شرایط دمایی بالا در کورههای ویژه میباشد که با اعمال تیمارهای مخصوص در نهایت منجر به استخراج فلزات از کان سنگ فلزی میگردد. این روشها به هیدرومتالوژی معروف هستند و از گذشته تا کنون برای استخراج فلزات گرانبها مورد استفاده قرار میگرفتند. محصول نهایی این روش استخراج فلزات، به عنوان ضایعات حاصل از استخراج فلزات، غلظت کمی از فلزات را دارد و در اصطلاح کم عیار میباشد. از آنجایی که با روش مرسوم استخراج فلزات، نمیتوان فلز موجود در آنها را استخراج نمود، از روشهای موسوم به فروشویی زیستی برای استخراج فلز از کانسنگ کم عیار استفاده میشود تا به استخراج فلز از کانسنگ کم عیار، منجر گردد. از طرفی روشهای مرسوم استخراج فلزات، اثرات زیست محیطی منفی به دنبال دارد و معادن صنعتی استخراج فلزات، همواره به دنبال راههای دوستدار محیط زیست به عنوان جایگزین روشهای مرسوم استخراج فلزات هستند که فروشویی زیستی فلزات، یکی از این گزینههاست. بدین منظور، برای غنیسازی هر چه بیشتر جمعیت میکروبی به منظور استفاده در فروشویی زیستی فلز مس از کانسنگ کم عیار مس، به شناسایی باکتریهای اکسید کننده گوگرد در معدن مس سرچشمه کرمان اقدام گردید. باکتریهای بومی موجود در محیط، ضمن توان رقابت پذیری بالایی که دارند امکان سازگاری با شرایط اقلیمی محیط را بیشتر از گونههای غیر بومی دارند و از این جهت، بیشتر مورد توجه هستند (19). سینتیک واکنش اکسایش گوگرد، پایین است و از طرفی، عملکرد باکتریهای اکسید کننده گوگرد نیز متفاوت میباشد، یعنی برخی تند رشد بوده و توانایی اکسیدکنندگی بالایی دارند و برخی کند رشد بوده و توانایی اکسید کنندگی پایینی دارند (15 و 17). به طور کلی، توانایی اکسیدکنندگی گوگرد در سویههای گرما دوست و اسید دوست بیشتر از سویههای خنثیدوست معتدل دوست است (18). این توانایی متفاوت آنها در اکسیدکنندگی گوگرد، به ژنهای موجود در ژنوم این میکروارگانیسمها ارتباط دارد (43 و 46). جنسهای مختلفی از قبیل Acidithiobacillus sp، Starkey sp، Acidiphilium sp، Acidianus sp و Sulfolobus spتوانایی اکسید کنندگی گوگرد را دارند. بر این مبنا، هدف از این پژوهش، ارزیابی عملکرد سویههای مختلف اکسیدکننده گوگرد در معدن مس سرچشمه بود. بدین منظور، به جداسازی و شناسایی باکتریهای اکسیدکننده گوگرد از معدن مس سرچشمه، اقدام گردید تا از نتایج آن، برای اهداف صنعتی مانند فروشویی زیستی فلز مس استفاده گردد.
مواد و روشها
نمونهبرداری: به منظور جداسازی و شناسایی باکتریهای اکسید کننده گوگرد، نمونهبرداری از خاک محدوده معدن مس سرچشمه واقع در استان کرمان، انجام گردید. بدین منظور، 22 نمونه خاک در شرایط استریل به آزمایشگاه منتقل و در دمای 4 درجه سانتی گراد نگهداری شدند. آزمایشهای شیمیایی شامل، اسیدیته و شوری توسط دستگاه پهاش سنج و ای سی سنج مدل یونیکم، انجام شدند. غنیسازی نمونهها بر روی محیط پایه معدنی 9k که گوگرد به عنوان تنها منبع انرژی به آن اضافه شده بود، انجام گردید (29). محیط پایه معدنی (گرم در لیتر) شامل K2HPO45/0، KCl 1/0، MgSO4. 7H2O 5/0، Ca(NO3)201/0، (NH4)2SO43 وFeSO4.7H2O 01/0 به همراه 1 گرم در لیتر گوگرد بود. شرایط اسیدیته محیط کشت، 5/1 تا 5/7 و دمای محیط کشت 25 و 45 درجه سانتی گراد تعیین شد تا شرایط برای جداسازی باکتریهای اسید دوست و خنثی دوست (14) و همچنین معتدل دوست و گرمادوست معتدل مهیا گردد (38).
جداسازی: یک گرم از نمونه خاک با 50 میلی لیتر از محیط کشت 9k حاوی 1 گرم گوگرد در لیتر، در داخل ارلن 200 میلی لیتری ریخته شد و به مدت 2 هفته در دمای 30 و 45 درجه سانتی گراد در همزن با دور rpm 120 گرماگذاری شدند. سپس 200 مایکرولیتر از این محلول، مجدد در شرایط مشابه، به محیط کشت جدید منتقل و گرماگذاری انجام شد. این عمل، برای هر نمونه، 5 بار تکرار شد و در نهایت، محیطهایی که رشد میکروبی آن بر اساس کدورت ایجاد شده، قابل تشخیص بود، به منظور جداسازی سویه خالص اکسید کننده گوگرد، انتخاب گردید.
خالصسازی: به منظور خالص سازی سویههای اکسید کننده گوگرد، رقتهای متوالی تا 6-10 تهیه و به محیط کشت آگار 9k ، منتقل شد و به روش ریختن در پلیت و با استفاده از میله U شکل در پلیت، به طور یکسان پخش گردید. پلیتها به مدت 2 هفته در دمای 30 و 45 درجه سانتی گراد گرماگذاری شده و بعد از این مدت، کلنیهای رشد کرده، به روش خطی، کشت داده شدند و سپس خالصسازی سویهها انجام گردید. به منظور اطمینان از خالص بودن نمونهها، 5 مرحله تجدید کشت انجام شد (41).
انتخاب سویه برتر: به منظور ارزیابی توانایی اکسایش گوگرد، جدایههای خالصسازی شده در مرحله قبل، به محیط کشت مایع پایه معدنی 9k، منتقل گردیدند و بر مبنای تغییر اسیدیته و سولفات محیط، ارزیابی شدند. در این مرحله، بهترین جدایه از نظر توانایی اسیدی کردن محیط و همچنین تولید سولفات، انتخاب گردید.
بررسی تغییرات pH و سولفات توسط جدایهها: به منظور بررسی تغییرات pH و سولفات توسط جدایههای مورد آزمایش، تیمارهای دمایی 25، 30، 35، 40 و 45 و همچنین تیمارهای اسیدیته 5/1، 5/2، 5/3، 5/4، 5/5، 5/6 و 5/7 در محیط کشت پایه معدنی 9k، اعمال گردید.
استخراج DNA و واکنش زنجیرهای پلیمراز: شناسایی مولکولی سویههای مورد نظر با استفاده از ماکر 16S rRNA انجام شد. بدین منظور ابتدا زیست توده از سویهها تهیه شد و سپس با استفاده از کیت استخراج DNA شرکت کیاژن مطابق دستورالعمل شرکت مذکور، به استخراج DNA اقدام گردید. سنجش کیفی DNA، با الکتروفورز ژل آگاروز 1 درصد و سجش کمی DNA، با استفاده از نانودراپ و با محاسبه نسبت nm 280/260 انجام شد. PCR و تکثیر ژن مربوطه با استفاده از پرایمرهای 27f (5´-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3´) و 1492r (5´-AAGGAGGTGATCCAGCCGCA-3´) انجام گردید و تأیید آن به وسیله الکتروفورز انجام شد. واکنش زنجیرهای پلیمراز در حجم نهایی 50 مایکرولیتر انجام گردید که 5 مایکرولیتر بافر PCR X1، 5 مایکرولیتر بافر MgCl2 با غلظت برابر 2 میلی مولار، 4 مایکرو لیتر dNTP با غلظت 100 مایکرو مولار، 5/2 مایکرو لیتر از هر پرایمر رفت و برگشت با غلظت 5/0 مایکرو مولار، 1 مایکرو لیتر آنزیم Taq DNA پلیمراز U/µl 02/0، 1مایکرو لیتر DNA و 29 مایکرو لیتر آب مقطر استفاده شد. واکنش زنجیرهای پلیمراز به شرح زیر انجام شد: واسرشت اولیه در دمای 95 درجه سانتی گراد برای مدت 5 دقیقه، 35 چرخه تکرار شونده شامل واسرشت در دمای 94 درجه سانتی گراد برای 30 ثانیه، اتصال در دمای 59 درجه سانتی گراد برای مدت 50 ثانیه و سنتز در دمای 72 درجه سانتی گراد برای مدت 2 دقیقه و پس از اتمام این 30 چرخه، برای سنتز نهایی، مدت 10 دقیقه در دمای 72 درجه سانتی گراد. در مرحله بعد، محصول PCR، با استفاده از کیت فرمنتاز و مطابق دستورالعمل شرکت مذکور، کلون گردید و با استفاده از دستگاه سکوئنسر، توالییابی شد.
آنالیز دادهها: نتایج توالییابی با استفاده از نرمافزار Chromas 2.01 (Technelysium Pty Ltd) ویرایش گردید و با استفاده از نرمافزار BLASTn با توالیهای معتبر ثبت شده در پایگاه ژنی NCBI مقایسه شد و نزدیکترین سویه بر اساس مشابهت در توالی ژن 16S rRNA شناسایی گردید. تحلیل تبارزایی سویهها با استفاده از نرمافزار ClustalW انجام شد (50). رسم درخت تبارزایی با استفاده از الگوریتم Neighbor-Joining و با استفاده از نرم افراز MEGA6 انجام گردید (22).
نتایج
آنالیز شیمیایی: جدول 1، اسیدیته و هدایت الکتریکی نمونههای مورد بررسی را نشان میدهد. میانگین اسیدیته نمونهها 56/4 و هدایت الکتریکی آنها 75/2 دسی زیمنس بر متر بود. بدین ترتیب، نمونههای مورد آزمایش، اسیدی بوده و نسبتاً شور بودند.
توانایی اکسایش گوگرد: در مرحله غنیسازی، از محیطهای کشت که به وسیله نمونهها تلقیح شده بودند و کدورت ایجاد کرده بودند، 3 سویه با توانایی اکسایش گوگرد خالصسازی شد. جدول 2، توانایی آنها در شرایط یکسان محیط (اسیدیته 7، دمای 30 درجه سانتی گراد، rpm 120)، از نظر تغییر اسیدیته و تولید سولفات نشان میدهد. شماره سویهها (148، 155 و 184) نشان دهنده مراحل مختلف جدا سازی و خالص سازی آنها از نمونه های خاک بود.
جدول 1- اسیدیته و هدایت الکتریکی خاکهای مورد بررسی
پارامترها |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
نمونهها |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
میانگین |
||
|
S1 |
S2 |
S3 |
S4 |
S5 |
S6 |
S7 |
S8 |
S9 |
S10 |
S11 |
S12 |
S13 |
S14 |
S15 |
S16 |
S17 |
S18 |
S19 |
S20 |
S21 |
S22 |
|
pH |
56/4 |
53/4 |
31/4 |
43/4 |
69/4 |
69/4 |
59/4 |
01/5 |
51/4 |
60/4 |
52/4 |
40/4 |
56/4 |
46/4 |
56/4 |
58/4 |
56/4 |
57/4 |
54/4 |
56/4 |
56/4 |
56/4 |
56/4 |
EC(dS/m) |
75/2 |
76/2 |
76/2 |
75/2 |
75/2 |
75/2 |
77/2 |
71/2 |
75/2 |
75/2 |
71/2 |
74/2 |
73/2 |
75/2 |
75/2 |
75/2 |
75/2 |
69/2 |
75/2 |
74/2 |
81/2 |
75/2 |
75/2 |
1S: نمونه شماره 1 EC: هدایت الکتریکی
جدول 2 نشان میدهد، از میان سویههای مورد بررسی، سویه 184 بیشترین توانایی اکسایش گوگرد را نشان داد و سویههای 148 و 155 گرچه قادر به رشد در روی محیط کشت بودند ولی در شرایط دمایی و اسیدیته موجود (درجه حرارت 30 درجه سانتی گراد و اسیدیته 5/7) توانایی کمتری برای اکسایش گوگرد نشان دادند که در مرحله بعدی آزمایش، شرایط بهینه دما و اسیدیته آنها برای رشد و اکسایش گوگرد، تعیین گردید.
بررسی بیشترین تغییرات pH و سولفات:در مرحله بعد، برای اینکه حداکثر توان اکسایش سویهها تعیین گردد، شرایط بهینه رشد آنها به وسیله اعمال تیمارهای مختلف دمایی و اسیدیته طی مدت 2 هفته، تعیین گردید.
جدول 2- توانایی سویهها برای تغییر اسیدیته و تولید سولفات در شرایط محیطی یکسان (اسیدیته 5/2 و دمای 30 درجه سانتی گراد و rpm 120)
سویه |
تغییرات pH |
تغییرات سولفات(mg S/l) |
148* |
70/1 |
342 |
184 |
00/2 |
385 |
155 |
11/0 |
33 |
*: شماره سویهها (148، 155 و 184)، نشان دهنده مراحل مختلف جداسازی و خالص سازی آنها از نمونههای خاک بود.
(ب) در دمای 30 درجه سانتی گراد (الف) در اسیدیته 5/2
شکل 1- تغییرات pH و سولفات برای جدایههای مورد آزمایش بعد از 2 هفته در محیط کشت 9k، در pH و درجه حرارت ثابت
شکل 1 تغییرات pH و سولفات برای جدایههای مورد آزمایش بعد از 2 هفته در محیط کشت 9k، در pH و درجه حرارت ثابت را نشان میدهد.
|
|
شکل 2- درخت تبارزایی سویههای اکسید کننده گوگرد بر اساس روش Neighbor-Joining منتج از آنالیز توالیهای ژن 16S rRNA . عدد نشان داده شده در گرهها، نشان دهنده bootstrap 1000 میباشد.
بر اساس نتایج شکل 1 (الف)، در شرایطی که اسیدیته محیط کشت 5/2 باشد، سویه های مورد بررسی از نظر دمای بهینه رشد، به دو گروه تقسیمبندی شدند. گروه اول، شامل 2 سویه 184 و 148 بود که مزوفیل بودند و دمای بهینه رشد آنها 30 درجه سانتی گراد به دست آمد. گروه دوم شامل سویه 155 بود که در گروه ترموفیل معتدل جای گرفت و دمای بهینه رشد آن، 40 درجه سانتی گراد تعیین شد. همچنین از شکل 2 (ب) چنین بر میآید که سویههای مورد بررسی از نظر اسیدیته بهینه رشد، در دمای 30 درجه سانتی گراد، همگی اسید دوست بودند و در اسیدیته 5/2 بیشترین رشد را نشان دادند. بدین ترتیب 2 سویه 148 و 184 مزوفیل و اسید دوست بودند و سویه 155 نیز ترموفیل معتدل و اسید دوست بود.
شکل 1 (الف و ب) نشان داد، سویه 184 بیشترین توانایی اکسایش گوگرد را در شرایط مزوفیل و ترموفیل معتدل نشان داد. به طوری که اکسایش گوگرد در شرایط مزوفیل همواره بیشتر از شرایط ترموفیل بود. شکل 1 (الف) نشان داد در اسیدیته 5/2، بیشترین توانایی تغییر اسیدیته محیط، 2 واحد بود که توسط سویه 184 به دست آمد و کمترین توانایی اکسایش گوگرد نیز به وسیله سویه 155 به دست آمد که 7/0 بود که این روند در تولید سولفات نیز مشاهده شد. به طوری که بیشترین و کمترین تولید سولفات 385 و 33 میلی گرم گوگرد در لیتر به دست آمد که به ترتیب مربوط به سویههای 184 و 155 بود. دامنه تغییرات اسیدیته در پژوهش حاضر حدود 2 است که این نتیجه، با سایر تحقیقات همخوانی داشت (52). شکل 1 (ب) نیز نشان داد در دمای 30 درجه سانتی گراد، 3 سویه مورد بررسی همگی اسید دوست بودند و اسیدیته بهینه آنها 5/2 به دست آمد. در این شرایط، بیشترین و کمترین تغییرات اسیدیته به ترتیب به سویههای 184 و 155 تعلق داشت و بیشترین و کمترین تغییرات سولفات نیز به همین سویه مربوط بود. جدول 3 دما و اسیدیته (بهینه و رشدی) سویه را نشان میدهد. این نتایج با نتایج پژوهش قبلی همخوانی نشان داد (39).
جدول 3- دما و اسیدیته (بهینه و رشدی) سویه
سویه |
دمای بهینه |
دمای رشد |
اسیدیته بهینه |
اسیدیته رشد |
148 |
30 |
45-10 |
5/2 |
5/6-5/1 |
184 |
30 |
45-10 |
5/2 |
5/6-5/1 |
155 |
40 |
60-20 |
5/2 |
5/5-5/1 |
شناسایی بر اساس توالی 16S rRNA: نتایج تعیین توالی ژن 16S rRNAسویههای مورد نظر و مقایسه شباهت آنها با دادههای معتبر ثبت شده در پایگاه NCBI، در جدول 4 نشان داده شده است.
جدول 4- مقایسه میزان شباهت ژن 16S rRNA سویههای مورد آزمایش با سویههای استاندارد
نام سویه |
شماره دستیابی |
درصد شباهت |
سویه استاندارد با بیشترین میزان شباهت |
تاکسونومی |
148 |
KR020047 |
6/94 |
Acidithiobacillus thiooxidans NR 115265
|
Acidithiobacillales, Acidithiobacillaceae, |
184 |
KR020046 |
0/95 |
Acidithiobacillus ferridurans NR 117036
|
Bacteria; Proteobacteria; Gammaproteobacteria; Acidithiobacillales; Acidithiobacillaceae; Acidithiobacillus |
155 |
KR020045 |
6/94 |
Sulfobacillus acidophilus NR 074758 |
Bacteria; Firmicutes; Clostridia; Clostridiales; Clostridiales incertae sedis; Clostridiales Family XVII. Incertae Sedis; Sulfobacillus; Sulfobacillus acidophilus |
بر اساس نتایج مشاهده شده در جدول 4، سویه 148، 184 و 155 به ترتیب Acidithiobacillus thiooxidans، Acidithiobacillus ferridurans و
Sulfobacillus acidophilusشناسایی شدند. دو سویه 148 و 184 به گاماپروتئوباکتریا تعلق داشتند ولی سویه 155 به Firmicutes تعلق داشت.
آنالیز فیلوژنیک: شکل 2، درخت تبارزایی سویههای اکسید کننده گوگرد بر اساس روش Nighbor-Joining منتج از آنالیز توالیهای ژن 16S rRNA را نشان میدهد.
بر اساس شکل 2، جدایههای مورد بررسی در دو گروه قرار گرفتند. 2 سویه 148 و 184 در یک گروه monocladetic قرار دارند و سویه 155 در گروه جداگانه قرار گرفت.
بحث
همان طور که در مقدمه ذکر شد، استفاده از باکتریهای اکسیدکننده گوگرد در فروشویی زیستی فلزات موجود در کانیهای سولفیدی، ضمن به کارگیری کانسنگهای کم عیار در استخراج فلزات، هزینه کمتری در بردارد و اثرات زیست محیطی منفی روشهای مرسوم استخراج فلزات را نیز در بر ندارد و کاربرد فروشویی زیستی، در آینده، روبه فزونی خواهد گذاشت (1، 2، 11، 31، 37 و 42).
نتایج آنالیزها نشان داد، که از 3 سویه مورد بررسی، 2 سویه Acidithiobacillus sp.و 1 سویه دیگر Sulfobacillus sp.بود که در تحقیقات قبلی نیز (11، 37 و 42) این باکتریها در محیط معدن گزارش شده بودند. در طی فرآیند زیستی اکسایش گوگرد، محصولات متنوعی تولید میگردد ولی در هر حال محصول نهایی سولفات میباشد (3) که از این ترکیب در کنار شاخص تغییر اسیدیته، میتوان در ارزیابی توان اکسایش گوگرد استفاده کرد. در این پژوهش نیز از توانایی تغییر اسیدیته و تولید سولفات برای ارزیابی توانایی اکسایش گوگرد توسط باکتریها، استفاده گردید که این پارامترها، شاخص خوبی برای سنجش توانایی اکسایش گوگرد، مورد ارزیابی قرار گرفتند (6).
از میان 3 سویه شناسایی شده، سویه 184 بیشترین توانایی اکسایش گوگرد را نشان داد. سویه 184، با 95 درصد شباهت به گونه Acidithiobacillus ferridurans تعلق داشت. باکتریهای اکسید کننده گوگرد که خنثی دوست و قلیا دوست هستند بیشتر در کلاس بتا پروتئوباکتریا قرار دارند و شناخته شدهترین جنسهای باکتریهای اکسید کننده گوگرد هستند (27). اما سویه 184 در کلاس گاماپروتئوباکتریا قرار داشت. این باکتری گرم منفی، شکل straight rods اسیددوست، مزوفیل، بیهوازی اختیاری و شیمیولیتوتروف اجباری است که علاوه بر توانایی اکسایش گوگرد، توانایی اکسایش آهن را نیز داشت. این نتایج با سایر تحقیقات (20) همخوانی داشت. باید در نظر داشت 3 گونهAcidithiobacillus ferrooxidans, Acidithiobacillus ferridurans و Acidithiobacillus ferrivoransبسیاری از خصوصیات فیزیولوژیک یکسانی دارند ولی برخی خصوصیات فنوتیپی (از قبیل تحرک) متفاوت نیز دارند (20 و 49). Acidithiobacillus thiooxidansجنس اسیدی تیوباسیلوس با توجه به نقشی که در فرآیند اکسایش گوگرد دارد از نظر اقتصادی در صنعت بسیار مهم است. رشد کند و مشکل بودن رشد برروی محیطهای جامد که از مشخصات این باکتریهاست ضرورت جداسازی، شناسایی و به کار گیری گونه های جدید با کارآیی بالاتر را نشان می دهد ( 5 و 8). این جدایه، گرم منفی، مزوفیل، شیمیولیتوتروف، اسیدی دوست بود که با نتایج تحقیقات قبلی (39) همخوانی داشت. Sulfobacillus acidophilus باکتری ترموفیل معتدل، هوازی، گرم مثبت، اسید دوست و rod شکل، کلنی گرد، عدم توانایی رشد در حضور شناساگر بود. این نتایج با تحقیق قبلی همخوانی داشت (24). این جدایه، از گوگرد عنصری و پیریت به عنوان تنها منبع انرژی و از سوبسترای آلی از قبیل گلوکز و گلوتامات به عنوان منبع کربن استفاده میکند. این نتایج با سایر تحقیقات قبلی (13) همخوانی داشت. خصوصیات فیزیولوژیک و شناسایی توالیهای DNA نشان داد که این باکتری، گونه جدیدی از Sulfobacillus sp بود.
نتایج تحقیقی نشان داد که نرخ اکسایش گوگرد بعد از 2 هفته به حد ثابتی میرسد (20 و 21) که این نتیجه نیز با نتایج تحقیق حاضر همخوانی داشت. در یک پژوهش، باکتریهای اکسید کننده گوگرد، اسیدیته محیط را طی دو هفته تا 8 واحد کاهش دادند و مقدار تولید سولفات تا 20 میلی گرم گوگرد بر گرم گزارش شد (40). همچنین در گزارشی دیگر، بین 10 تا 40 میلی گرم گوگرد بر کیلوگرم خاک، طی مدت 10 هفته تولید گردید (44). بر اساس نتایج این پژوهش تغییرات سولفات و اسیدیته، کمتر از نتایج گزارشات قبلی بود که میتواند به دلیل تفاوت در توانایی اکسایش گوگرد توسط باکتریها باشد. نتایج تحقیقی (20 و 47) نشان داد که اسیدی تیوباسیلوس فرواکسیدانس در دمای کمتر از 30 درجه سانتی گراد و اسیدیته بالای 7/0 توانایی اکسایش گوگرد را داشت که این نتایج با نتایج این پژوهش همخوانی داشت. در یک تحقیق (35)، دمای بهینه رشد سولفوباسیلوس را 55 درجه سانتی گراد گزارش کردند. گرچه بیشتر تمرکز مطالعات انجام شده بر روی گونههای مزوفیل Thiobacillus بوده است ولی در مورد گونه های ترموفیل آن نیز مطالعاتی انجام شده است (27، 28 و 34).
هر 3 سویه مورد بررسی اسید دوست بودند ولی دو سویه 148 و 184 در دمای 30 درجه سانتی گراد رشد بهینه داشتند و مزوفیل بودند، ولی سویه 155 در دمای 40 درجه سانتی گراد رشد مطلوب داشت و ترموفیل معتدل بود که با نتایج تحقیق قبلی (30) همخوانی نشان داد. همچنین در تحقیق حاضر، هر 3 سویه مورد بررسی، اسید دوست و توانایی تحمل اسیدیته کم را داشتند ولی سویه 184 توانایی تحمل اسیدیته کمتری را نشان داد. این نتایج با نتایج پژوهش قبلی همخوانی نشان داد (20). نتایج پژوهش حاضر در مورد Sulfobacillus acidophilus با نتایج تحقیق قبلی همخوانی نشان داد.
علت تفاوت در توانایی اکسایش گوگرد در میان سویههای مختلف به تفاوت در عملکرد ژنهای اکسایش گوگرد و آهن (از قبیل sox – اکسید کننده گوگرد- iro – اکسید کننده آهن- و rus) مربوط است (20 و 44). به طوری که تنوع ژنی نیز موجب تنوع آنزیمی در فرآیند اکسایش گوگرد میشود (25، 33 و 48). به عنوان مثال، A. ferrooxidans و A. ferrivorans ژن تثبیت کننده نیتروژن (نیتروژناز) را دارند که بقیه ندارند (20). در Acidithiobacillus ferridurans برخی ژنها اختصاصی هستند مثل ژن iro که کدکننده iron oxidase میباشد و در دو سویه دیگر (Acidithiobacillus thiooxidans, Sulfobacillus acidophilus) وجود ندارد و برخی ژنها عمومی است مثل ژن rusB که کدکننده iso-rusticyanin میباشد و در دو سویه دیگر نیز وجود دارند (49). از دیگر دلایل تفاوت در عملکرد باکتریهای اکسیدکننده گوگرد، مربوط به تنوع ژنی اپرون sox است (45). به طوری که آلفا پروتئوباکتریا، اپرون کامل sox (sulfur oxidizing) را دارند ولی بتا و گاما پروتئوباکتریا، اپرون sox را به طور ناقص دارند، یعنی ژنهای کد کننده سولفور دهیدروژناز را ندارند و به جای آن سیستم احیای برگشتی سولفات را دارند (15). در Sulfobacillusژنهای اختصاصی Calvin–Benson–Bassham (cbb) نقش دارند (9). در این پژوهش، سویه 148 و 184 (Acidithiobacillus spp.) متعلق به گاما پروتئوباکتریا بودند ولی سویه 155 (Sulfobacillus sp.) متعلق به Firmicutesبود که این خود یکی دیگر از دلایل تفاوت عملکرد این سویهها بود.
علت اینکه باکتریهای اکسید کننده گوگرد در دماهای مختلف، عملکرد متفاوتی دارند نیز به سیستم آنزیمی آنها مربوط می شود. به عنوان مثال، آنزیم cytochrome c که از طریق مسیر TOMES، در اکسایش گوگرد دخالت دارد توسط بخشی از اپرون sox به نام soxAXانجام میگیرد (10 و 26) که این آنزیم در مزوفیلهای اکسید کننده گوگرد، به دمای بالا حساس بوده و فعالیت خود را در دمای بالا از دست میدهد (32 و 36).Sulfobacillus acidophilus که در گروه ترموفیلهای معتدل قرار دارد آنزیمهای مقاوم به دمای بالا دارند که در اصطلاح ترمو آنزیم (thermozymes) نامیده میشوند به طوری که در این دما قادر به فعالیت و رشد هستند (23 و 51).
با توجه به این نتایج و در نظر گرفتن اینکه عملکرد سویههای 148 و 184 در دمای 30 درجه سانتی گراد در سطح مطلوبی قرار داشت، برای عملیات فروشویی زیستی فلز مس از کانسنگ سولفیدی آن، در شرایط اسیدی، پیشنهاد میگردد و استفاده از سویه 155، برای شرایط اسیدی و دمای 40 درجه سانتی گراد، پیشنهاد میگردد. بر اساس نتایج تحقیق حاضر، سویه 184 بیشترین توانایی اکسایش گوگرد را نشان داد که آنالیز مولکولی نشان داد این سویه به Acidithiobacillus ferridurans تعلق دارد.
با توجه به اینکه شباهت سه سویه شناسایی شده در این پژوهش با سویههای استاندارد، کمتر از 99 درصد بود احتمالاً سویههای جدیدی هستند که بومی ایران میباشند و تحقیق در مورد ثبت این گونههای جدید نیازمند آنالیز دقیقتر آنها میباشد. فاکتورهای مختلفی از قبیل تعداد جمعیت میکروبی، تنوع جمعیت میکروبی، شرایط اقلیمی (از قبیل درجه حرارت، هوادهی، پتانسیل آب در خاک)، سطح ویژه گوگرد در تماس با محیط، اندازه ذرات، فراوانی باکتریهای هترتروف موجود در محیط و فراوانی سوبسترای ترکیبات آلی و معدنی (Attoe & Olson 1966; Germida & Janzen 1993)، در اکسایش گوگرد دخیل هستند (4 و 16).
نتیجهگیری
در پژوهش حاضر، بر اساس نتایج شناسایی مولکولی و آزمایشات انجام شده، 3 سویه اکسید کننده گوگرد شناسایی گردید که 2 سویه آن (148، 184) مزوفیل و اسید دوست بودند (به ترتیب Acidithiobacillus thiooxidansوAcidithiobacillus ferridurans). در حالی که سویه دیگر (155)، ترموفیل معتدل و اسید دوست بود (Sulfobacillus acidophilus). از میان این 3 سویه، سویه 184، بیشترین توانایی اکسایش گوگرد را نشان داد که میتواند در فروشویی زیستی مس مورد استفاده قرار گیرد.
سپاسگزاری
این پژوهش، با حمایت مالی شرکت ملی صنایع مس ایران (مجتمع مس سرچشمه، امور تحقیق و توسعه) انجام شد که بدین وسیله، تشکر و قدردانی میگردد.