اثر ریزنمونه، نیتروپروساید و سیلیکون در اندام‌زایی درون شیشه‌ای گوجه‌فرنگی (Lycopersicon esculentum Mill.)

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
1 دانشگاه تبریز- دانشکده کشاورزی
2 دانشگاه تبریز
چکیده
در پژوهش حاضر، اثرسدیم نیتروپروساید و سیلیکون روی اندام‌‌زایی ریزنمونه‌های لایه نازک کوتیلدونی با برش‌های عرضی ریز یک میلی‌متری گوجه‌فرنگی (Lycopersicon esculentum Mill.) مورد مطالعه قرار گرفت. این تحقیق در سه آزمایش صورت گرفت. در آزمایش اول ریزنمونه‌های 8 و 12 روزه در محیط‌کشت MS تکمیل شده با ۲ میلی‌گرم‌ در ‌لیتر BAP و 2/0 میلی‌گرم‌ در ‌لیتر IAA کشت داده شدند. ریزنمونه های دوازده روزه تقریبا در محیط کشت بکارگرفته شده بدون پاسخ به اندام زایی نکروزه شده و از بین رفتند در حالی که ریزنمونه‌های 8 روزه اندام‌زایی قابل توجهی داشتند. در آزمایش دوم اثر نوع ریزنمونه و تنظیم‌کننده‌هایBAP به تنهایی و در ترکیب با NAA و IAA در بهبود اندام‌‌زایی ریزنمونه‌های مذکور مورد مطالعه قرار گرفت. نتایج این آزمایش نشان داد که تقریبا تمامی تیمارها بالای 90 درصد اندام‌زایی داشتند. در تجزیه تعداد شاخساره، تیمار 2 میلی‌گرم در لیتر BAP و 2/0 میلی‌گرم در لیتر IAA بیشترین تعداد شاخساره را نشان داد. نتایج آزمایش سوم نشان داد که غلظت‌های 10، 15 و 30 میکرومولار سدیم نیتروپروساید به ترتیب موجب افزایش معنی دار تعداد شاخساره، افزایش تعداد شاخساره و همچنین افزایش القاء ریشه گردید. غلظت‌های50 و 5 میلی‌گرم در ‌لیتر سیلیکون موجب افزایش شاخساره‌ در ریزنمونه‌ها گردید ولی افزودن500 میلی‌گرم در ‌لیتر سیلیکون موجب عدم باززایی شده و شاخساره‌ای هم تشکیل نشد. افزودن مکمل سیلیکون و سدیم نیتروپروساید در غلظت‌های بالا تاثیر معنی‌داری بر درصد باززایی کوتیلدون و لایه‌ نازک سلولی گیاه گوجه‌فرنگی نداشتند.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


عنوان مقاله English

Effect of explant, soum nitroprosside and silicon on in-vitro organogenesis of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.)

نویسنده English

Hanie Jeiranpor 1
1 Faculty of agriculture, university of Tabriz
چکیده English

In the present study, the effect of sodium nitroprusside and silicon on the organogenesis of cotyledonary thin cell layer explants of tomato of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) was studied. This research was conducted in three independent experiments. In the first experiment, cotyledon explants and thin cell layers with 1 mm transverse sections of 8 and 12 days old cotyledons were cultured in MS medium supplemented with 2 mg/L BAP and 2 0.0 mg/L of IAA. Obviously almost all 8-day-old explants regenerated shoots but 12-day-old explants get the necrosis without any organogenesis. After determining the best age of the explant, in the second experiment the effect of BAP alone and in combination with NAA and IAA was evaluated in improving the organogenesis of tomato using both explants. The results showed that almost all Plant regulator combination had more than 90% organogenesis. In the analysis of the number of shoots, the medium supplemented with 2 mg/L of BAP and 0.2 mg/L of IAA showed the highest shoots number per explant. In the third experiment adding 10, 15 and 30 μM of sodium nitroprusside, significantly increased the shoot induction frequency, number of shoots per explants and root induction, respectively. The addition of 50 and 5 mg/L of silicon to the culture medium increased the number of shoots per explants, but adding 500 mg/L of silicon completely stopped the organogenesis.

کلیدواژه‌ها English

In vitro organogenesis Regeneration
Tissue culture
Plant growth regulator
Explant

اثر ریزنمونه، سدیم نیتروپروساید و سیلیکون در اندام­زایی درون شیشه­ای گوجه­فرنگی

(Lycopersicon esculentum Mill.)

حانیه جیران پور خامنه و ابراهیم دورانیà

ایران، تبریز، دانشگاه تبریز، دانشکده کشاورزی، گروه به نژادی و بیوتکنولوژی گیاهی

تاریخ دریافت: 14/10/1401          تاریخ پذیرش: 19/07/1402

چکیده

در پژوهش حاضر، اثر سدیم نیتروپروساید و سیلیکون روی اندام­­زایی ریزنمونه­های لایه نازک کوتیلدونی با برش­های عرضی ریز یک میلی­متری گوجه­فرنگی (Lycopersicon esculentum Mill.) مورد مطالعه قرار گرفت. این تحقیق در سه آزمایش صورت گرفت. در آزمایش اول ریزنمونه­های 8 و 12 روزه در محیط­کشت MS تکمیل شده با ۲ میلی­گرم­ در ­لیتر BAP و 2/0 میلی­گرم­ در ­لیتر IAA کشت داده شدند. ریزنمونه های دوازده روزه تقریبا در محیط کشت بکارگرفته شده بدون پاسخ به اندام زایی نکروزه شده و از بین رفتند در حالی که ریزنمونه‌های 8 روزه اندام­زایی قابل توجهی داشتند. در آزمایش دوم اثر نوع ریزنمونه و تنظیم­کننده­هایBAP  به تنهایی و در ترکیب با NAA و IAA در بهبود اندام­­زایی ریزنمونه­های مذکور مورد مطالعه قرار گرفت. نتایج این آزمایش نشان داد که تقریبا تمامی تیمارها بالای 90 درصد اندام­زایی داشتند. در تجزیه تعداد شاخساره، تیمار 2 میلی­گرم در لیتر BAP و 2/0 میلی­گرم در لیتر IAA بیشترین تعداد شاخساره را نشان داد. نتایج آزمایش سوم نشان داد که غلظت­های 10، 15 و 30 میکرومولار سدیم نیتروپروساید به ترتیب موجب افزایش معنی دار تعداد شاخساره، افزایش طول شاخساره و همچنین افزایش القاء ریشه گردید. غلظت­های 50 و 5 میلی­گرم در ­لیتر سیلیکون موجب افزایش شاخساره­ در ریزنمونه­ها گردید ولی افزودن500 میلی­گرم در ­لیتر سیلیکون موجب عدم باززایی شده و شاخساره­ای هم تشکیل نشد. افزودن مکمل سیلیکون و سدیم نیتروپروساید در غلظت­های بالا تاثیر معنی­داری بر درصد باززایی کوتیلدون و لایه­ نازک سلولی گیاه گوجه­فرنگی نداشتند.

واژه­های کلیدی: اندام­زایی کشت درون­شیشه­ای، باززایی، تنظیم­کننده­ی رشد، ریزنمونه، کشت­بافت.

* نویسنده مسئول، شماره تلفن:04133392160 ، پست الکترونیکی: dorani@tabrizu.ac.ir

 

مقدمه

 

در بین محصولات صیفی، گوجه­فرنگی
 
(Solanum lycopersicum L.)  بیشترین اهمیت را در جهان داراست و پس از سیب­زمینی و سیب­زمینی شیرین،  بیشترین حجم تولید تره­بار جهانی را دارد (17). گوجه­فرنگی از لحاظ ارزش غذایی بسیار کم کالری (22 کیلوکالری در هر 100 گرم) عاری از کلسترول، سرشار از فیبر و ویتامین­های مختلف (A، C و E) و موادمعدنی میباشد (30). علاوه براین گوجه­فرنگی یک منبع عالی از مواد­مغذی مفید برای سلامتی از جمله بتاکاروتن و لیکوپن است (18).

کشت گوجه­فرنگی به دلیل آلودگی به آفات، بیماری­ها و تنش­های غیرزیستی متحمل خسارات زیادی می­شود. کاربرد روش‌های جدید اصلاحی از جمله مهندسی ژنتیک برای اصلاح ژنتیکی این گیاه برای مقاومت به آفات و بیماری­ها بیش از پیش ضروری به نظر می­رسد (5).

بدون یک سیستم قابل اطمینان، تکرار پذیر و کارآمد برای باززایی گیاهان یکسان ژنتیکی از توده کوچکی از سلولهای تراریخته، تولید گیاه کامل اصلاح ­شده ژنتیکی امکان ­پذیر نیست (5). بنابراین اولین قدم در تراریختی گیاهان دستیابی به یک روش موثر و موفق در اندام­زایی و کشت درون شیشه‌ای گیاهان می‌باشد. موفقیت در پاسخ به باززایی گوجه­فرنگی به طور عمده بستگی به ژنوتیپ، نوع ریزنمونه، نوع و غلظت تنظیم کننده­های­ رشد گیاهی دارد. امروزه به عنوان یک اصل علمی پذیرفته شده است که بدون تنظیم ­کننده­های رشد گیاهی، کشت درون­شیشه­ای گیاهان تقریبا ناممکن است. انتخاب ریزنمونه مناسب برای اندام­زایی درون‌شیشه‌ای در گوجه­فرنگی بطور قابل توجهی وابسته به ژنوتیپ گیاه است (15). رقم محلی بناب یکی از ارقام خوش طعم محلی گوجه فرنگی است که با توجه به هزینه‌های بالای بذور هیبرید در بخش قابل توجهی از استان آذربایجان­شرقی کشت می‌شود. مطالعات پایه در کشت درون شیشه‌ای آن می تواند یک قدم رو به جلو در اصلاح مولکولی این گیاه باشد. ارقام ارزشمند تجاری گوجه­فرنگی، با استفاده از روش­های مختلف کشت­بافت شامل کشت­جوانه انتهایی، جنین­زایی سوماتیکی (Somatic embryogenesis)، اندام­زایی مستقیم از ریزنمونه­ها تکثیر شده­اند (14). یکی از ریزنمونه­های که در کشت­بافت و مهندسی ژنتیک به طور موفقیت­آمیزی مورد استفاده قرار گرفته است، کشت لایه­ ­نازک ­­سلولی  (Thin cell layers)(TCL) است. فناوری لایه نازک سلولی روشی است که در آن امکان مطالعه سلولی، فیزیولوژیکی، بیوشیمیایی و تغییرات مولکولی که در یک برنامه ریخت­زایی مانند جنین­زایی سوماتیک، شاخه­زایی و ریشه­زایی اتفاق می­افتد، وجود دارد. اساس این روش استفاده از ریزنمونه­های بسیار کوچک است (23). این ریزنمونه­ها از اندام­های مختلف گیاه مانند قسمت­های مختلف گل، ریشه، ریزوم، ساقه، برگ، اپی­کوتیل، هیپوکتیل و جنین بریده می­شوند (11).

جهت باززایی گوجه­فرنگی، شمار زیادی از تنظیم کننده­های مختلف گیاهی با غلظت­های مختلف مورد استفاده قرار گرفته ­است. مقدار و نوع تنظیم ­کننده­های رشد بر میزان درصد پاسخ ریزنمونه­ها و تعداد شاخه­های تولید شده توسط ریزنمونه تاثیر می­گذارد (5). BAP در ترکیب با IAA باعث باززایی شاخه­ها و القای شاخساره از ریزنمونه­های گوجه­فرنگی ­شد و همچنین مشاهده شد که مقدار بالای اکسین منجر به ایجاد مقدار زیادی ریشه می­شود (38).

با آن که سیلیکون به عنوان یک عنصر ضروری در گیاهان در نظر گرفته نمی­شوند ولی مطالعات متعددی نشان داده اند که استفاده از سیلیکون در محیط کشت­بافت باعث افزایش رشد کالوس، باززایی شاخه­ها و القای ریشه و تحریک جنین­زایی و بهبود خصوصیات ریخت­شناسی، آناتومی و فیزیولوژیکی گیاهچه­ها می­شود (4).

سدیم­نیتروپروساید نیز یکی از ترکیباتی است که نقش آن در ریخت­زایی گیاهان به اثبات رسیده است (31). نیتریک اکساید در تنظیم فرایندهای تکوینی مختلف و رشد گیاه از جمله در رشد ریشه، تنفس، گل دهی و مرگ­ سلولی نقش دارد (13). سدیم­ نیتروپروساید (یک دهنده نیتریک اکساید) توانایی القای شاخساره را افزایش می­دهد و همچنین به بافت­ها اجازه می­دهد تا دوباره احیا و باززا شوند (25).

در این مقاله اثر ترکیب سیلیکون، سدیم نیتروپروساید در ریز­ازدیادی توده محلی بناب گوجه­فرنگی با استفاده از ریزنمونه لایه نازک سلول­های کوتیلدونی گزارش می­شود.

مواد و روشها

اﻳﻦ ﭘﮋوﻫﺶ در آزﻣﺎﻳﺸﮕﺎه زیست فناوری داﻧﺸﻜﺪه ﻛﺸﺎورزی داﻧﺸﮕﺎه ﺗﺒﺮﻳﺰ اﻧﺠﺎم ﺷﺪ. بذور گوجه­فرنگی رقم بناب از مرکز تحقیقات کشاورزی آذربایجان‌شرقی تهیه شد. بذور در شرایط استریل زیر هود لامینار ابتدا به مدت 90 ثانیه در اتانول 70 درصد و سپس با هیپوکلریت سدیم (وایتکس) 5/2 درصد به مدت 15 دقیقه ضد عفونی شد و در محیط­کشت MS½ حاوی نمک­های MS، ویتامین­های B5، 30 گرم بر لیتر ساکارز و 6 گرم بر لیتر آگار کشت شدند (5). در آزمایش اول ریزنمونه­های کوتیلدونی (کوتیلدون کامل با قاعده برش یافته) و قطعات کوتیلدونی با برش­های عرضی یک میلی­متری به عنوان لایه نازک از کوتیلدون­های 8 و 12 روزه حاصل از کشت استریل بذور رقم مذکور تهیه و در یک محیط­کشت MS تکمیل شده با 2 میلی­گرم­ در­ لیتر BAP و 2/0 میلی­گرم ­در ­لیتر IAA  قرار داده ­شدند. از هر نوع ریزنمونه 5 عدد در هر پتری کشت شدند. کشت­ها در اتاق رشد با دمای 2±25 درجه سلسیوس و دوره نوری 16 ساعت روشنایی و 8 ساعت تاریکی با شدت نور در حد 2000 لوکس نگهداری شدند (34).

در آزمایش دوم بعد از مشخص شدن بهترین سن ریزنمونه­ها اثر تنظیم کننده­های BAP (5/0، 1، 5/1 و 2 میلی­گرم­ در­ لیتر) به تنهایی و در ترکیب با NAA (2/0 و 4/0 میلی­گرم ­در ­لیتر) و IAA (2/0 و 4/0 میلی­گرم ­در لیتر) در بهبود ظرفیت اندام­­زایی رقم مذکور با استفاده از دو ریزنمونه کوتیلدونی و لایه نازک سلولی در یک آزمایش فاکتوریل برمبنای طرح کاملاً تصادفی با 3 تکرارمورد مطالعه قرار گرفتند.

در آزمایش سوم پس از انتخاب بهترین تیمار برای شاخه­­زایی ریزنمونه­های مذکور، برای به­دست­آوردن بهترین ترکیب از اثر سدیم نیتروپروساید (10، 15 و 30 میکرو مولار) و سیلیکون (5، 50 و500 میلی­گرم در لیتر) هر کدام به صورت تکی و در ترکیب با هم  در یک آزمایش فاکتوریل برمبنای طرح کاملا تصادفی انجام شد. برای این منظور ریزنمونه­ها در محیط­­کشت تکمیل ­شده با تنظیم ­­کننده­­های ­رشد­ گیاهی بهینه شده در ترکیب با یکی از تیمار­های مذکور قرار داده شدند.

این آزمایش به صورت فاکتوریل مجزا با طرح پایه کاملاً تصادفی در 3 تکرار به اجرا در آمد. پس از انجام آزمایش­ها، اطلاعات مربوط به درصد باززایی و میانگین تعداد شاخه باززا شده برای هر ریزنمونه محاسبه گردیدند. تجزیه و تحلیل آماری داده­ها به کمک نرم­افزار )26  (SPSS V صورت گرفت و مقایسه میانگین­ها با آزمون چند دامنه­ای دانکن (P≤0/05) انجام شد. جهت رسم نمودارها از نرم­افزار Excel استفاده گردید.

نتایج و بحث

طی آزمایش مقدماتی جهت تشخیص بهترین نوع و سن ریزنمونه رقم بناب گوجه­فرنگی، دو ریزنمونه کوتیلدون و TCL (قطعات کوتیلدونی با برش­های عرضی یک میلی­متر) در محیط­کشت حاوی 2/0 میلی­گرم ­در ­لیتر IAA و 2 میلی­گرم­ در ­لیتر BAP کشت شدند (شکل 1 الف). طی نتیجه ی این آزمایش کوتیلدون­های 12 روزه باززایی مناسبی نداشتند ولی ریزنمونه­های 8 روزه بهترین میزان باززایی و تعداد شاخساره را داشتند. به طوری که اختلاف میزان باززایی به حدی بود که نیاز به آنالیز اماری برای تعیین معنی داری آنها نبود. لذا ریزنمونه­های 8 روزه که بهترین باززایی را داشتند به عنوان بهترین سن ریزنمونه برای بقیه آزمایش انتخاب شدند (شکل 1 ب). سن ریزنمونه در موفقیت کشت­بافت مؤثر بوده و بافت­های نرم و جوان در مقایسه با بافت­های پیر برای کشت­بافت انعطاف پذیرتر هستند. سلول­­های تشکیل دهنده ­بافت­های جوان واکوئل­های کوچک­تری داشته و در آن­ها نسبت هسته به کل سلول­ زیادتر است، بنابراین توانایی و فعالیت این سلول­ها نسبت به سلول­های پیرتر برای تقسیم­سلولی بیشتر می­باشد (5). بافت­های جوان­تر از نظر فیزیولوژیکی پاسخ بهتری به کشت ­درون شیشه­ای نشان می­دهند و به همین دلیل ریزنمونه­هایی که از بافت­های مسن­تر گرفته شده­اند اغلب قدرت باززایی ندارند. همچنین استریل کردن ریزنمونه­های جوان­تر برای دستیابی به یک کشت عاری از آلودگی راحت­تر است (5). دایی و همکاران (1988) گزارش کردند که ظرفیت باززایی در گوجه فرنگی با افزایش سن ریزنمونه کاهش یافت. در این مطالعه افزایش سن چهار روزه ریزنمونه ها در توده زراعی بناب ظرفیت باززایی را تا نزدیک صفر کاهش داد.

 

 

Polish_۲۰۲۲۱۲۰۳_۲۳۵۰۵۶۴۰۴Polish_۲۰۲۲۱۲۰۳_۲۳۵۱۲۹۴۱۱Polish_۲۰۲۲۱۲۰۳_۲۳۵۲۱۵۳۴۰Polish_۲۰۲۲۱۲۰۳_۲۳۵۲۵۸۳۶۸Polish_۲۰۲۲۱۲۰۳_۲۳۵۴۰۵۸۹۶Polish_۲۰۲۲۱۲۰۳_۲۳۵۴۳۸۴۳۲Polish_۲۰۲۲۱۲۰۳_۲۳۵۵۱۴۲۳۹

 

شکل 1- الف) عدم پاسخ کوتیلدون­ها و TCLهای 12 روزه رقم بناب به اندام­زایی پس از یک ماه. ب) کوتیلدون­ها و TCLهای بریده شده از برگ گیاه گوجه­فرنگی.  ج) اندام­زایی گوجه فرنگی در محیط حاوی 2 میلی­گرم­ در­ لیتر BAP و 2/0 میلی­گرم بر لیتر IAA. د) اندام زایی گیاه گوجه­فرنگی در حضور 15 میکرومولار  SNP. ن) اندام زایی گیاه گوجه­فرنگی در حضور  5 میلی­گرم در لیتر سیلیکون. و) اندام زایی گیاه گوجه­فرنگی در حضور 50 میلی­گرم در لیتر سیلیکون. ه) عدم اندام زایی گیاه گوجه­فرنگی در حضور 500 میلی­گرم در لیتر سیلیکون.

 

 

بعد از مشخص شدن بهترین سن ریزنمونه­ها در آزمایش اول، اثر ریزنمونه و تنظیم­ کننده­های BAP (5/0، 1، 5/1 و 2 میلی­گرم­ در­ لیتر) به تنهایی و در ترکیب با NAA (4/0,2/0 میلی­گرم ­در ­لیتر) و IAA (4/0,2/0 میلی­گرم ­در لیتر) در بهبود ظرفیت اندام­­زایی رقم بناب در یک آزمایش فاکتوریل برمبنای طرح کاملا تصادفی با 3 تکرار مطالعه و سپس نمونه­ها هر دو هفته یکبار به محیط­­کشت جدید منتقل ­شدند. تجزیه واریانس نشان داد که اثر ریز نمونه در هر دو صفت اندام‌زایی غیر معنی دار بود و اختلافی بین دو ریز نمونه در این رقم از لحاظ قدرت باززایی وجود نداشت. ولی دو ریزنمونه در ترکیب­های تنظیم کننده گیاهی متفاوت پاسخ متفاوتی را نشان دادند (جدول 1).

هر چند در این بررسی دو ریزنمونه از لحاظ اندام­زایی تفاوت معنی­داری نداشتند ولی با توجه به اینکه از هر کوتیلدون گیاه گوجه­­فرنگی می­توان حدود 5 تا 8 لایه نازک سلولی به عرض 1 میلی­متر تهیه کرد، کارایی آن در ریز ازدیادی آن به مراتب بیشتر می‌تواند باشد.

مقایسه میانگین 20 ترکیب تنظیم کننده­های رشد گیاهی برای درصد باززایی ریزنمونه­ها و تعداد شاخساره­های باززا شده از هر ریزنمونه به ترتیب در شکل­های 2 و 3 آمده است. نتایج مربوطه نشان می­دهد که بطور کلی تمامی تیمارها به جز تیمار 1 میلی­گرم در لیتر BAP و 2/0 میلی­گرم در لیتر IAA آن هم تنها در مورد ریزنمونه TCL، باززایی بالای 90 درصد را داشتند.

بیشترین تعداد شاخساره بدست آمده فقط به ترکیب تنظیم­ کننده­­های ­رشد­ 2 میلی­گرم در لیتر BAP و 2/0 میلی­گرم در لیتر IAA تعلق داشت. بقیه­ی ترکیب­های تنظیم کننده­های رشدی از نظر آماری به طور معنی­داری تعداد شاخساره کمتری نسبت به این ترکیب نشان داده­اند (شکل 1 ج).

نوع ریزنمونه مورد استفاده برای کشت­بافت و باززایی، نه تنها در تعداد ریزنمونه باززا شده، بلکه در تعداد شاخساره تولید شده از هر ریزنمونه هم مؤثر است (35).

 

جدول 1- تجزیه واریانس داده­های مربوط به صفات درصد باززایی و تعداد شاخساره مورد مطالعه در آزمایش اول (BAP همراه با NAA وIAA ).

                                                                                                 میانگین مربعات

منابع تغییرات

درجه آزادی

درصد باززایی

تعداد شاخساره

ریزنمونه

1

ns480

ns115/0

ترکیب تنظیم کننده رشد گیاهی

19

*684/193

*384/4

ریزنمونه*ترکیب تنظیم کننده­های رشد گیاهی

19

*263/185

*812/0

خطای آزمایش

80

333/33

067/0

کل

119

_

_

ضریب تغییرات(%)

_

93/5

31/14

 

 

انتخاب نوع ریزنمونه، نوع و غلظت تنظیم کننده­های رشد گیاهی برای موفقیت در باززایی درون شیشه­ای دارای اهمیت زیادی است و توانایی ریزنمونه­های مختلف از لحاظ موفقیت در کشت درون شیشه­ای متفاوت می­باشد (12). کشت­­بافت گوجه­فرنگی و باززایی گیاه در شرایط آزمایشگاهی از ریزنمونه­های مختلف (از جمله لپه­ خرد شده بذر، هیپوکتیل­ها، برگ­ها، بخش­های ­ساقه و دمبرگ) از طریق مسیر ارگانوژنز صورت گرفته است (38). درصد باززایی ریزنمونه­ها در ژنوتیپ­های مختلف بررسی شده و کوتیلدون و هیپوکتیل­ها بهترین گزینه برای باززایی گوجه­فرنگی محسوب می­شوند (40). در رقم مورد مطالعه استفاده از هر دو نوع ریزنمونه اثر یکسانی را در قدرت اندام­زایی داشتند و هر دو ریزنمونه اندام­زایی خوبی را داشتند. استفاده از برش­های نازک سلولی به عنوان ریزنمونه، باعث افزایش کالوس­زایی، جنین­زایی و در نهایت باززایی و افزایش تعداد شاخساره می­گردد. مشخص شده است که ریزنمونه­های TCL به دلیل اینکه تعداد سلول کمتر و معینی دارند، سطح تماس این ریزنمونه­ها با محیط­کشت افزایش می­یابد و قابلیت جذب مواد­غذایی و ترکیبات هورمونی در آنها نسبت به نمونه­های بزرگتر بهتر و سریعتر می­شود. مزیت کشت­بافت به روش TCL این است که این سیستم دارای سلول­های مشابه از نظر فیزیولوژیکی و بیوشیمیایی هستند و می­توانند تمام الگوهای مورفوژنز را باهم آغاز کنند و با استفاده از فاکتور­های مختلف، انواع فرآیندهای ریخت­زایی را در سیستم کشت لایه نازک سلولی القاء کنند (21 و 34). استفاده از لایه‌های سلولی نازک عرضی (tTCL) بریده‌شده از مریستم‌های آپیکال ساقه نهال‌های دو هفته‌ای برنج (Oryza sativa L.) موجب تولید مستقیم شاخساره برنج، در یک بازه زمانی کوتاه، با عملکرد بالا و بدون نیاز به خرده‌کشتی شد (23). استفاده از روش لایه نازک سلولی در گیاه استویا (Stevia rebaudiana) موجب افزایش کارایی بافت این گیاه شد (27).

بیشترین تعداد شاخساره در محیط­کشت حاوی 2 میلی­گرم در لیتر BAP و 2/0 میلی­گرم در لیتر IAA  حاصل ­شد که مطابق با مطالعه ویکرام و همکاران (2011) بود که گزارش کردند که در ترکیب BAP همراه با IAA، بازه غلظت 3-5/3 میلی­گرم در لیتر BAP و 1/0 میلی­گرم در لیتر IAA بیشترین تعداد شاخساره را به ازای ریزنمونه تولید می­­­کند (36). محمد و همکاران (20) نیز گزارش کردند که بیشترین تعداد شاخساره در محیط­کشت حاوی 2 میلی­گرم درلیتر BAP در ترکیب با 5/2 میلی­گرم در لیتر IAA حاصل شد. پاسخ به باززایی و القای جوانه به حضور BAP در محیط بستگی دارد (22 و 36). تحقیقات نشان داد که محیط­کشت حاوی سیتوکنین زآتین و اکسین IAA در تمام موارد به طور معنی­داری بهتر از ترکیب محیط­کشت حاوی BAP و NAA بود (7). در محیط­کشت حاوی ترکیبی از BAP و IAA میزان باززایی مشابه با محیط­کشت حاوی سیتوکنین زآتین با IAA بوده است (3 و 16). BAP در ترکیب با IAA باعث باززایی شاخه­ها و القای شاخساره از ریزنمونه­های گوجه­فرنگی ­شد و همچنین مشاهده شد که مقدار بالای اکسین منجر به ایجاد مقدار زیادی ریشه میشود (40).

 

 
 

تیمار

 

 

 


شکل 2- میانگین درصد ریزنمونه­های باززا شده کوتیلدون و TCL با اعمال 20 ترکیب تنظیم کننده­های رشد گیاهی مختلف.

*حروف مشابه نشان­ دهنده عدم اختلاف معنی­دار بین تیمارها در سطح احتمال یک درصد می­باشد.

 

 

Text Box: تعداد شاخساره های باززا شدهشکل 3- میانگین تعداد شاخساره­های باززا شده از کوتیلدون­ها و TCL با اعمال 20 ترکیب تنظیم کننده­های رشد گیاهی مختلف.

* حروف مشابه نشان­ دهنده عدم اختلاف معنی­دار بین تیمارها در سطح احتمال یک درصد می­باشد.

 

پس از انتخاب بهترین تیمار برای شاخه­­زایی ریزنمونه­های مذکور، آزمایش سوم برای به­دست­آوردن بهترین ترکیب از اثر سدیم نیتروپروساید و سیلیکون در قالب فاکتوریل مبتنی بر طرح کاملاً تصادفی انجام شد. برای این منظور ریزنمونه­های منتخب در محیط­­کشت تکمیل ­شده با تنظیم­ کننده­­های ­رشد­ گیاهی بهینه شده در ترکیب با یکی از تیمار­های مذکور قرار داده ­شدند.

اثر سیلیکون و سدیم نیتروپروساید در اندام­زایی درون شیشه‌ای گوجه فرنگی: در جهت بهبود کیفی و کمی اندام زایی درون‌شیشه‌ای گوجه فرنگی رقم بناب اثر دو ترکیب سدیم نیتروپروساید و سیلیکون مورد مطالعه قرار گرفت. تجزیه آماری داده­های بدست آمده برای صفات درصد باززایی و تعداد شاخساره نشان داد که اثر ریزنمونه غیر معنی­دار بود ولی بین تیمارها هم از نظر درصد باززایی و هم از نظر تعداد شاخساره در سطح احتمال 1 درصد اختلاف معنی­دار وجود داشت و اثر متقابل ریزنمونه با تیمار تکمیلی در صفت درصد باززایی غیر معنی دار ولی در تعداد شاخساره باززا شده معنی دار بود (جدول 2) (شکل های 4 و 5).

 

 

جدول 2- تجزیه واریانس داده­های مربوط به صفات درصد باززایی و تعداد شاخساره مورد مطالعه در آزمایش سوم.

                                                                                                         میانگین مربعات

منابع تغییرات

درجه آزادی

درصد باززایی

تعداد شاخساره

ریزنمونه

1

ns66/66

ns021/0

ترکیب تنظیم کننده­های رشد گیاهی

8

*29/4596

*143/13

ریزنمونه*ترکیب تنظیم کننده­های رشد گیاهی 

8

ns 100

*768/1

خطای آزمایش

36

66/66

43/0

کل

53

_

_

ضریب تغییرات(%)

_

105/0

02/5

 

Text Box: درصد ریزنمونه های باززا شده

 

شکل4- میانگین درصد ریزنمونه­های باززا شده کوتیلدون و TCL در پاسخ به ترکیب منتخب آزمایش دوم همراه با دو نوع مکمل سیلیکون و سدیم نیتروپروساید.  *حروف مشابه نشان­ دهنده عدم اختلاف معنی­دار بین تیمارها در سطح احتمال یک درصد می­باشد.

شکل 5- میانگین درصد تعداد شاخساره از کوتیلدون­ها و  TCLدر پاسخ به ترکیب منتخب آزمایش دوم همراه با دو نوع مکمل سیلیکون و سدیم نیتروپروساید.  *حروف مشابه نشان­ دهنده عدم اختلاف معنی­دار بین تیمارها در سطح احتمال یک درصد می­باشد.

 

 

 

مقایسه میانگین تیمارها نشان داد که اضافه کردن 10 و 15 میکرومولار SNP به محیط اندام زایی موجب افزایش تعداد شاخساره و رشد طولی شاخه­ها و در غلظت 15 میکرومولار باعث تولید ریشه نیز شد (شکل 1 د). در حالی که اضافه کردن 30 میکرومولار SNP موجب کاهش تعداد شاخساره نسبت به شاهد شده و همچنین باززایی را هم کاهش ­داد ولی در این میزان از SNP  موجب تولید ریشه بیشتر شد.

از عوامل تعیین کننده در اندام زایی مستقیم درون شیشه­ای در گوجه فرنگی تنظیم کننده های رشد گیاهی و غلظت مناسب آن است. در بین تنظیم کنند­های سیتوکنینی استفاده از غلظت بالاتری از BAP  در ترکیب با غلظت­پایین تری از اکسین­های طبیعی مانند IAA نتایج بهتری را در اندام زایی بهمراه دارد.  عزیز خواجه و دورانی ( 1397) ببیشترین تعداد اندام زایی درون­شیشه­ای را در گوجه فرنگی از محیط کشت تکمیل شده با 5/1 میلی­گرم در لیتر BAP و 2/0 میلی­گرم در لیتر IAA گزارش کردند (2). در مطالعه حاضر بهترین اندام زایی از تیمار 2 میلی­گرم در لیتر BAP همراه 2/0 میلی گرم در لیتر IAA  حاصل شد (شکل 3) که هر چند رقم های مورد استفاده در این دو مطالعه متفاوت بودند ولی نتایج تقریبا به هم نزدیک بود. در مطالعه ای بر روی اندام زایی گیاه دارویی هندوانه ابوجهل انجام گرفت بهترین اندام زایی در حضور یک اکسین قوی مانند NAA با غلظت 1 میلی­گرم در لیتر و BAP با میزان پایین تری ( 1 میلی­گرم در لیتر ) بدست آمد (1). این تفاوت­های فاحش در میزان مناسب تنظیم کننده های مورد استفاده می تواند به خاطر تفاوت در میزان هورمون­های داخلی ریزنمونه گیاهی متاثر از گونه و نوع بافت باشد.   

تحقیقات انجام شده در مورد اثرات مثبت مکمل SNP نشان داد که این مکمل در تقسیم­­سلولی و همچنین در باززایی و تکثیر شاخه­ها نقش دارد. استفاده از سدیم نیتروپروساید (SNP) به­عنوان اهدا­کننده NO در نشاء گوجه­فرنگی (Lycopersicon esculentum Mill.) باعث ظهور و افزایش طول ریشه­جانبی شد (8). در تکثیر آزمایشگاهی چای کوهی در محیط­کشت MS استفاده از 2/2 میکرومولار BAP همراه با 10 میکرومولار SNP باعث افزایش تکثیر شاخساره­ها شد. استفاده از 20 میکرومولار SNP بیشترین طول شاخه (8/1± 5/17 میلی­متر) را نشان داد. با این حال، SNP (10-40 میکرومولار) باعث بروز علائم بیش از حد رطوبت 30-100٪ در گیاهچه­ها شد (29). در آزمایشی بر روی والریانا محیط­کشت حاوی 5/1 میلی­گرم­ بر­لیتر NAA همراه با 15 میکرومولار SNP موجب تشکیل حداکثر تعداد کالوس (18/91٪) گردید. ولی استفاده مکمل SNP به تنهایی و بدون NAA به طور قابل توجهی باعث کاهش کالوس­­زایی شد و باززایی اغلب بافت­ها را میسر کرد. استفاده از 15 میکرومولار SNP حداکثر شاخه­­زایی (32/89٪) در شرایط آزمایشگاهی را نشان داد. در این آزمایش هیچ محیط القایی ریشه جداگانه­ای لازم نبود زیرا محیط­کشت حاوی SNP برای تولید ریشه کافی بود 27). این اثر SNP در غلظت بالای آن (30 میکرو مولار) در ریشه زایی گوجه فرنگی حتی در حضور سیتوکنین در این مطالعه مشاهده شد. نیتریک اکساید در غلظت­های پایین (10-200 میکرومولار) موجب افزایش تعداد و طول ریشه­های گیاه همیشه بهار گردد. درحالی که در غلظت­های بالا (1000 میکرومولار) موجب سرکوب ریشه­های گیاه همیشه بهار شد (18).

غلظت­های50 و 5 میلی­گرم در ­لیتر سیلیکون، موجب افزایش شاخساره­های ایجاد شده گردید (شکل 1 ن - و). اضافه کردن 500 میلی­گرم در لیتر مکمل سیلیکون کلا موجب متوقف شدن باززایی و در نتیجه عدم رشد ریزنمونه شده و شاخساره­ای هم تشکیل نشد (شکل 1 ه). سیلیکون دارای مزیت­هایی از جمله افزایش ظرفیت فتوسنتز، افزایش مقدار کلروفیل­ها، کاهش تعرق، افزایش رشد گیاه و افزایش مقاومت مکانیکی سلول می­باشد (40). در آزمایشی برروی گونه­ای گیاه ارکیده با افزایش مقدار سیلیکون از 01/0 به 5/0 میلی­گرم در لیتر رشد گیاهچه­ها افزایش یافت. بیشترین مقدار رشد گیاهچه­ها زمانی رخ داد که مقدار سیلیکون از 5/0 به 1 میلی­گرم در لیتر افزایش یافت (39). در مطالعات قبلی گزارش شده است که استفاده از سیلیسیم میتواند با افزایش جذب نیتروژن و فرایند متابولیسم اولیه کارایی استفاده از نیتروژن را افزایش دهد (32). مطالعات زیادی تاثیر مثبت کاربرد عنصر سیلیسیم بر بیان ژن­های دخیل در سیستم دفاعی گیاهان نظیر چالکون سنتاز، فنیل آلانین آمونیالیاز، پراکسیداز، کیتیناز و سایر ژن­های مربوط را تایید کرده­اند (38).

اضافه کردن مکمل سیلیکون و سدیم نیتروپروساید در غلظت­های بالا، تاثیر چندانی بر درصد باززایی کوتیلدون و لایه­ نازک سلولی گیاه گوجه­فرنگی نداشت و درمورد تیمارهای مکمل 500 میلی­گرم در لیتر سیلیکون و 30 میکرومولار سدیم نیتروپروساید تعداد شاخساره­ها از نظر آماری به شکل معنی­داری کمتر از شاهد نیز بودند. نکته جالب اینکه 500 میلی­گرم در لیتر سیلیکون به تنهایی باعث ایجاد تنش در ریزنمونه شد ولی درصورت استفاده همزمان از SNP و سیلیکون در غلظت بالا تا حدودی سدیم نیتروپروساید از اعمال تنش توسط سیلیکون جلوگیری کرده و موجب باززایی ریزنمونه­ها شد. نتایج مشابهی را از اثرات غلظت بالای سدیم نیتروپروساید در رشد مزرعه‌ای گوجه فرنگی گزارش شده است  (8). اندرسون و منسفایلد (1979) اثرات NO را وابسته به غلظت آن می­دانند (9).

اضافه­کردن 50 میلی­گرم در لیتر سیلیکون همراه با 15 میکرومولار سدیم نیتروپروساید موجب افزایش تعداد شاخساره­های باززا شده از کوتیلدون و لایه­ نازک سلولی گیاه گوجه­فرنگی شد.

نتیجه گیری

گوجه­فرنگی دارای اهمیت غذایی و دارویی بالایی است و تنش­های زیستی و غیر زیستی متعددی تولید آن را تحت تأثیر قرار می­دهد، از این رو در آزمایشگاه­های بسیاری در حال انجام تحقیقاتی برای دستورزی کیفیت مواد مغذی و تولید ارقام مقاوم به انواع تنش­ها از طریق تراریختی ژنتیکی هستند. همراه بودن یک سیستم باززایی و انتقال ژن موفق، در مطالعات پایه و کاربردی بسیار کمک کننده است. یک سیستم باززایی درون شیشه­ای مطلوب برای تراریختی ژنتیکی مؤثر با کاربرد تجاری ضروری است (4). بسیاری از ژنوتیپ­های گوجه­فرنگی پاسخ­های منحصر به فردی نسبت به تنظیم کننده­های رشد گیاهی در طول باززایی می­دهند (17). یکی از روش­هایی که در کشت­بافت و مهندسی ژنتیک به طور موفقیت­آمیزی مورد استفاده قرار گرفته است، لایه­ ­نازک ­­سلولی (TCL) است. استفاده از این روش موجب افزایش کارایی کشت­­بافت­ها در گونه­های مختلف گیاهی شده است (22). در این پژوهش مشخص شد که کشت لایه نازک سلولی در گوجه­فرنگی به صرفه و کاربردی است.

 تغییر در مقدار و نوع تنظیم کننده­های رشد گیاهی، درصد باززایی و تعداد شاخساره­های تولید شده به ازای هر ریزنمونه را تحت تأثیر قرار می­دهد (24). در این پژوهش بهترین ترکیب از بین 20 تیمار تنظیم کننده رشد گیاهی برای تولید شاخساره بیشتر، ترکیب 2 میلی­گرم در لیتر BAP و 2/0 میلی­گرم در لیتر IAA انتخاب شد.

علاوه ­بر مواد­غذایی محیط­­کشت، استفاده از یک سری مواد مکمل آلی در اندام­­زایی گیاهان در کشت­ درون­شیشه­ای و سازگاری آنها به محیط ­طبیعی تاثیر مثبتی داشته است (31). در این پژوهش از بین غلظت­های مورد بررسی، استفاده از سدیم نیتروپروساید در غلظت­های 10 و 15 میکرومولار باعث افزایش تعداد شاخساره شد. استفاده از سیلیکون در غلظت 50 میلی­گرم در لیتر باعث افزایش تعداد شاخساره و در غلظت 500 میلی­گرم در لیتر، موجب عدم باززایی و تولید شاخساره گردید. استفاده همزمان از سدیم نیترو پروساید و سیلیکون در غلظت­های مختلف موجب کاهش درصد باززایی و تعداد شاخساره شد.

1-    ق. ز.، ا. معصومی اصل. و ر. امیری فهلیانی. 1396. بررسی باززایی مستقیم گیاهچه در دو جمعیت گیاه دارویی هندوانه ابوجهل( Citrullus colosynthis L.)  با استفاده از انواع ریزنمونه و تنظیم کننده­های رشد. مجله پژوهشهای سلولی و مولکولی ( زیست شناسی ایران). 30 (3): 264-273
2-    عزیز خواجه، آ. و ا. دورانی. 1397. اثر پیش تیمار 2,4-D و تنظیم کننده­های رشد گیاهی بر باززایی گوجه فرنگی (Solanum lycopersicum L.). مجله پژوهشهای سلولی و مولکولی ( زیست شناسی ایران). 31(1): 67-75.
 
3- Ahsan, N., Lee, S.H., Lee, D.G., Anisuzzaman, M., Alam, M., Yoon, H.S., Choi, M. et al. 2007. The effects of wounding type, preculture, infection method and cocultivation temperature on the Agrobacterium‐mediated gene transfer in tomatoes. Annals of Applied Biology, 151(3): 363-372.
4- Al Murad, M., Khan, A.L. and Muneer, S. 2020. Silicon in horticultural crops: cross-talk, signaling, and tolerance mechanism under salinity stress. Plants, 9(4): 460.
5- Alatar, A.A., Faisal, M., Abdel-Salam, E.M., Canto, T., Saquib, Q., Javed, S.B., El-Sheikh, M.A. et al. 2017. Efficient and reproducible in vitro regeneration of Solanum lycopersicum and assessment genetic uniformity using flow cytometry and SPAR methods. Saudi Journal of Biological Sciences, 24(6): 1430-1436.
6- Bhatia, P., Ashwath, N. and Midmore, D.J. 2005. Effects of genotype, explant orientation, and wounding on shoot regeneration in tomato. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant, 41(4): 457-464.
7- Bhatia, P., Ashwath, N., Senaratna, T. and Midmore, D. 2004. Tissue culture studies of tomato (Lycopersicon esculentum). Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 78(1): 1-21.
8- Cedergreen, N. and Madsen, T.V. 2003. Nitrate reductase activity in roots and shoots of aquatic macrophytes. Aquatic Botany, 76(3): 203-212.
9- Corpas, F.J., Barroso, J.B., Carreras, A., Quirós, M., León, A.M., Romero-Puertas, M.C., Esteban, F.J. et al. 2004. Cellular and subcellular localization of endogenous nitric oxide in young and senescent pea plants. Plant physiology, 136(1): 2722-2733.
10- Correa-Aragunde, N., Graziano, M. and Lamattina, L. 2004. Nitric oxide plays a central role in determining lateral root development in tomato. Planta, 218(6): 900-905.
11- Da Silva, J.A.T. and Dobránszki, J. 2013. Plant thin cell layers: a 40-year celebration. Journal of Plant Growth Regulation, 32(4): 922-943.
 
12- Feher, A., Pasternak, T.P. and Dudits, D. 2003. Transition of somatic plant cells to an embryogenic state. Plant Cell, Tissue and Organ culture, 74(3): 201-228.
13- Floryszak-Wieczorek, J., Milczarek, G., Arasimowicz, M. and Ciszewski, A. 2006. Do nitric oxide donors mimic endogenous NO-related response in plants Planta, 224(6): 1363-1372.
14- Gao, N., Shen, W., Cao, Y., Su, Y. and Shi, W. 2009. Influence of bacterial density during preculture on Agrobacterium-mediated transformation of tomato. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (Pctoc), 98(3): 321-330.
15- George, E.F., Hall, M.A. and De Klerk, G.-J. 2008. The components of plant tissue culture media II: organic additions, osmotic and pH effects, and support systems, Plant propagation by tissue culture. Springer, pp. 115-173.
16- Gubis, J., Lajchová, Z., Faragó, J. and Jureková, Z. 2004. Effect of growth regulators on shoot induction and plant regeneration in tomato (Lycopersicon esculentum Mill.). Biologia-Bratislava, 59(3): 405-408.
17- Ishag, S., Osman, M.G. and Khalafalla, M.M. 2009. Effects of growth regulators, explant and genotype on shoot regeneration in tomato (Lycopersicon esculentum cv Omdurman). Int. J. Sustain. Crop Prod, 4(6): 7-13.
18- Kalloo, G. 2012. Genetic improvement of tomato, 14. Springer Science and Business Media.
19- Kurtz, S.M. and Lineberger, R.D. 1983. Genotypic differences in morphogenic capacity of cultured leaf explants of tomato. Journal of the American Society for Horticultural Science, 108(5): 710-714.
20- Liao, W., Xiao, H. and Zhang, M. 2009. Role and relationship of nitric oxide and hydrogen peroxide in adventitious root development of marigold. Acta physiologiae plantarum, 31(6): 1279-1289.
21- Mohamadi-Nasab, A., Motalebi-Azar, A. and Moktarzadeh, S. 2017. The effect of Naphthaleneacetic Acid and two cytokinins on callus and shoot induction from hypocotyls thin cell layer explants in tomato (Lycopersicon esculentum Mill). Agriculture and Forestry/Poljoprivreda Sumarstvo, 63(1).
22- Mohamed, A.-a.N., Ismail, M.R. and Rahman, M.H. 2010. In vitro response from cotyledon and hypocotyls explants in tomato by inducing 6-benzylaminopurine. African Journal of Biotechnology, 9(30): 4802-4807.
23- Nhut, D.T., Van Le, B. and Van, K.T.T. 2000. Somatic embryogenesis and direct shoot regeneration of rice (Oryza sativa L.) using thin cell layer culture of apical meristematic tissue. Journal of Plant Physiology, 157(5): 559-565.
 
24- Nhut, D.T., Van Le, B. and Van, K.T.T. 2001. Manipulation of the morphogenetic pathways of Lilium longiflorum transverse thin cell layer explants by auxin and cytokinin. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant, 37(1): 44-49.
25- Pandey, S., Sundararajan, S., Ramalingam, S. and Pant, B. 2020. Effects of sodium nitroprusside and growth regulators on callus, multiple shoot induction and tissue browning in commercially important Valeriana jatamansi Jones. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (Pctoc), 142(3): 653-660.
26- Plastira, V.A. and Perdikaris, A. 1996 .effect of genotype and explant type in regeneration frequevcy of tomato invitro, III International Symposium on In Vitro Culture and Horticultural Breeding 447, pp. 231-234.
27- Ramírez-Mosqueda, M.A. and Iglesias-Andreu, L.G. 2016. Direct organogenesis of Stevia rebaudiana Bertoni using thin cell layer (TCL) method. Sugar Tech, 18(4): 424-428.
28- Rodrigues, F.Á., McNally, D.J., Datnoff, L.E., Jones, J.B., Labbé, C., Benhamou, N., Menzies, J.G. et al. 2004. Silicon enhances the accumulation of diterpenoid phytoalexins in rice: a potential mechanism for blast resistance. Phytopathology, 94(2): 177-183.
29- Sarropoulou, V. and Maloupa, E. 2017. Effect of the NO donor “sodium nitroprusside”(SNP), the ethylene inhibitor “cobalt chloride”(CoCl 2) and the antioxidant vitamin E “α-tocopherol” on in vitro shoot proliferation of Sideritis raeseri Boiss. and Heldr. subsp. raeseri. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (Pctoc), 128(3): 619-629.
30- Seymour, G.B., Taylor, J.E. and Tucker, G.A. 2012. Biochemistry of fruit ripening. Springer Science and Business Media.
31- Siddiqui, M.H., Al-Whaibi, M.H. and Basalah, M.O. 2011. Role of nitric oxide in tolerance of plants to abiotic stress. Protoplasma, 248(3): 447-455.
32- Singh, K., Singh, R., Singh, J., Singh, Y. and Singh, K. 2006. Effect of level and time of silicon application on growth, yield and its uptake by rice (Oryza sativa). Indian Journal of Agricultural Science, 76(7): 410-413.
33- Tripathi, P., Tripathi, R.D., Singh, R.P., Dwivedi, S., Goutam, D., Shri, M., Trivedi, P.K. et al. 2013. Silicon mediates arsenic tolerance in rice (Oryza sativa L.) through lowering of arsenic uptake and improved antioxidant defence system. Ecological Engineering, 52: 96-103.
34- Van, D.T., Ferro, N. and Jacobsen, H.-J. 2010. Development of a simple and effective protocol for Agrobacterium tumefaciens mediated leaf disc transformation of commercial tomato cultivars. GM Crops, 1(5): 312-321.
35- Van, K.T.T. and Van Le, B. 2000. Current status of thin cell layer method for the induction of organogenesis or somatic embryogenesis, Somatic embryogenesis in woody plants. Springer, pp. 51-92.
36- Vikram, G., Srikanth, K. and Swamy, N.R. 2011. Effect of plant growth regulators on in vitro organogenesis in cultivated tomato (Solanum lycopersicum L.). J Res Biol, 1(4): 263-268.
37- Wangkaew, B. 2019. Silicon concentration and expression of silicon transport genes in two Thai rice Varieties. CMU J. Nat Sci, 18: 358-372.
38- Wayase, U. and Shitole, M. 2014. Effect of plant growth regulators on organogenesis in tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) cv. Dhanashri. International Journal of Pure and Applied Sciences and Technology, 20(2): 65.
39- Yin, L., Wang, S., Tanaka, K., Fujihara, S., Itai, A., Den, X. and Zhang, S. 2016. Silicon‐mediated changes in polyamines participate in silicon‐induced salt tolerance in S orghum bicolor L. Plant, Cell and Environment, 39(2): 245-258.
40- Zhang, W., Hou, L., Zhao, H. and Li, M. 2012. Factors affecting regeneration of tomato cotyledons. Bioscience Methods, 3.
41- Zhuo, T.-S. 1995. The detection of the accumulation of silicon in Phalaenopsis (Orchidaceae). Annals of Botany, 75(6): 605-607.
 
دوره 36، شماره 4
زمستان 1402
صفحه 248-260

  • تاریخ دریافت 14 دی 1401
  • تاریخ بازنگری 13 خرداد 1402
  • تاریخ پذیرش 19 مهر 1402