نوع مقاله : مقاله پژوهشی
نویسندگان
1 ایران، تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم تحقیقات، دانشکده علوم پایه، گروه زیست.
2 استاد، مرکز تحقیقات سلولی مولکولی، دانشگاه علوم پزشکی قزوین، قزوین،ایران
3 ایران، تهران، دانشگاه خوارزمی، دانشکده علوم زیستی، گروه علوم سلولی مولکولی
4 ایران، تهران، دانشگاه تهران، موئسسه بیوشیمی و بیوفیزیک
چکیده
روشهای درمانی کم خطر و کارآمد موضوع اصلی بسیاری از تحقیقات اخیر در زمینه درمان سرطان ملانوما بوده است. بر همین اساس، هدف در اینجا بررسی تأثیر کمپلکسهای نیکوتینیک-امگا 3 و پیکولینیک اسید-امگا 3 برروی تیروزیناز قارچ و ویژگیهای ضد تکثیری آنها روی رده سلولی ملانوما 375A- بود. در بررسی حاضر، سلولها در معرض سطوح مختلف کمپلکسهای نیکوتین-امگا 3 و پیکولینیک-امگا 3 قرار گرفتند. برای مشاهده تکثیر سلولی، از روش MTT و میکروسکوپ معکوس استفاده شد. تجزیه و تحلیل کنتیکی اثر این کمپلکسها بر آنزیم تیروزیناز نیز مورد بررسی قرار گرفت. کمپلکسهای نیکوتین-امگا 3 و پیکولینیک-امگا 3 با دنبال نمودن رفتاری وابسته به غلظت و زمان توانستند رشد سلولی را به طور قابل توجهی کاهش دهند. اثر مهارکنندگی معنیدار برای پیکولینیک-امگا 3 در غلظت کمتر با افزایش زمان مشاهده شد. از سوی دیگر، نیکوتین-امگا 3 سطح مشابهی از بازدارندگی را نشان نداد، و در 24 ساعت تنها سطح 200 میکرومولار معنیدار بود و در 48 ساعت و 72 ساعت، بازدارندگی معنیدار بین 150-200 میکرومولار مشاهده گردید. بدین معنا که رشد و تکثیر سلولهای سرطانی مورد بررسی به میزان قابل توجهی در زمان و غلظت مورد نظر کاهش یافت. شیوه عمل این دو کمپلکس بر روی تیروزیناز قارچ به صورت بازدارندگی رقابتی بود و مقادیر Ki شامل 2/5 و 1/5 میلی مولار، به ترتیب برای نیکوتین-امگا 3 و پیکولینیک-امگا 3 بود. به نظر میرسد کمپلکس های نیکوتین-امگا 3 و پیکولینیک-امگا 3 دارای پتانسیل ضد تکثیری قوی در برابر سلولهای ملانوما هستند، که دال بر پتانسیل کاربردی آنها در درمان ملانوما میباشند.
کلیدواژهها
موضوعات
عنوان مقاله [English]
Studying the activity of Nic-Omega 3 and Pic-Omega 3 complexes on Mushroom Tyrosinase and their anti-cancer properties in A-735 melanomas cell line
نویسندگان [English]
1 Dept. of Biology, Faculty of Basic Sciences, Science and Research Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran.
2 Professor of Biophysics, Department of Biotechnology and Biophysics, Qazvin University of Medical Sciences, Qazvin, Iran
3 Dept. of Cell and Molecular Sciences, Faculty of Biological Sciences, Khwarizmi University, Tehran, Iran
4 Institute of Biochemistry and Biophysics, University of Tehran, Tehran, Iran
چکیده [English]
Low-risk and efficient therapeutic approaches have been central themes of many recent studies on melanoma treatment. Accordingly, here the aim was to study the impact of nicotinic and picolinic acid-omega 3 complexes on mushroom tyrosinase and their antiproliferation effect on the A-375 melanoma cell line. The cells were exposed to various levels of nicotinic-omega 3 and picolinic-omega 3 complexes. To screen for cell proliferation, MTT assay and inverted microscope were applied. Kinetic analysis of the inhibitory effect of the complexes on tyrosinase enzyme was also evaluated. Nicotinic-omega 3 and picolinic-omega 3 complexes significantly reduced cell growth with a concentration and time-dependent behavior. The significant inhibitory effect for picolinic-omega-3 was observed in a lower concentration as the time increased. However, nicotinic-omega 3 did not manifest a similar potency level as in 24 h only 200 μM was significant, and in 48 h and 72 h, the significance in inhabitation was observed between 150-200 μM. Meaning that the growth and multiplication of the cells under those treatments decreased considerably. These two complexes affected mushroom tyrosinase in a competitive inhibitory manner with Ki values of 5.2 and 5.1 mM for nicotinic - omega-3 and picolinic - omega-3, respectively. It seems nicotinic -omega 3 and picolinic – omega 3 complexes are capable of solid antiproliferative potential against melanoma cells, indicating their potential applicability for the melanoma cancer treatment.
کلیدواژهها [English]
مطالعه فعالیت کمپلکسهای Nic-امگا 3 و Pic-امگا 3 روی تیروزیناز قارچ و ویژگی ضد سرطانی آنها روی سلولهای 375A- ملانوما
فرهاد سنگین آبادی1، نعمت االله غیبی2*، عادله دیوسالار3، علی اکبر صبوری4 و پریچهر یغمایی1
1 ایران، تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم تحقیقات، دانشکده علوم پایه، گروه زیست شناسی
2 ایران، قزوین، دانشگاه علوم پزشکی قزوین، مرکز تحقیقات سلولی مولکولی، گروه بیوتکنولوژی و بیوفیزیک
3 ایران، تهران، دانشگاه خوارزمی، دانشکده علوم زیستی، گروه علوم سلولی مولکولی
4 ایران، تهران، دانشگاه تهران، مؤسسه بیوشیمی و بیوفیزیک
تاریخ دریافت: 29/10/1400 تاریخ پذیرش: 30/03/1401
چکیده
روشهای درمانی کم خطر و کارآمد موضوع اصلی بسیاری از تحقیقات اخیر در زمینه درمان سرطان ملانوما بوده است. بر همین اساس، هدف در اینجا بررسی تأثیر کمپلکسهای نیکوتینیک-امگا 3 و پیکولینیک اسید-امگا 3 برروی تیروزیناز قارچ و ویژگیهای ضد تکثیری آنها روی رده سلولی ملانوما 375A- بود. در بررسی حاضر، سلولها در معرض سطوح مختلف کمپلکسهای نیکوتین-امگا 3 و پیکولینیک-امگا 3 قرار گرفتند. برای مشاهده تکثیر سلولی، از روش MTT و میکروسکوپ معکوس استفاده شد. تجزیه و تحلیل کنتیکی اثر این کمپلکسها بر آنزیم تیروزیناز نیز مورد بررسی قرار گرفت. کمپلکسهای نیکوتین-امگا 3 و پیکولینیک-امگا 3 با دنبال نمودن رفتاری وابسته به غلظت و زمان توانستند رشد سلولی را به طور قابل توجهی کاهش دهند. اثر مهارکنندگی معنیدار برای پیکولینیک-امگا 3 در غلظت کمتر با افزایش زمان مشاهده شد. از سوی دیگر، نیکوتین-امگا 3 سطح مشابهی از بازدارندگی را نشان نداد، و در 24 ساعت تنها سطح 200 میکرومولار معنیدار بود و در 48 ساعت و 72 ساعت، بازدارندگی معنیدار بین 150-200 میکرومولار مشاهده گردید. بدین معنا که رشد و تکثیر سلولهای سرطانی مورد بررسی به میزان قابل توجهی در زمان و غلظت مورد نظر کاهش یافت. شیوه عمل این دو کمپلکس بر روی تیروزیناز قارچ به صورت بازدارندگی رقابتی بود و مقادیر Ki شامل 2/5 و 1/5 میلی مولار، به ترتیب برای نیکوتین-امگا 3 و پیکولینیک-امگا 3 بود. به نظر میرسد کمپلکس های نیکوتین-امگا 3 و پیکولینیک-امگا 3 دارای پتانسیل ضد تکثیری قوی در برابر سلولهای ملانوما هستند، که دال بر پتانسیل کاربردی آنها در درمان ملانوما میباشند.
واژه های کلیدی: بازدارندگی رقابتی، تیروزیناز قارچ، پیکولینیک اسید، امگا 3، آنالیز سینتیکی
* نویسنده مسئول، تلفن: 028-22302634، پست الکترونیکی:ngheibi@qums.ac.ir
مقدمه
ملانوما اگرچه شایعترین نوع سرطان پوستی نبوده ولی خطرناکترین و کشندهترین نوع آن است که غالبا با ملانوسیتها آغاز میگردد، و پرتوهای فرابنفش از جمله عوامل اصلی آن شناخته شده است. از دیگر عوامل بنیانی آن میتوان به عوامل تضعیف کننده سیستم ایمنی، تماس با ترکیبات سمی و خالهای چندگانه مادرزادی اشاره نمود. پیشرفت ملانوما و بقای آن وابسته به سلولهای سرطانی و قابلیت دستکاری مسیر مرگ سلولی، گریز از نظارت ایمنی و زنده مانی در شرایط محیطی غیر مطلوب میباشد. از این جهت است که این سلولها قابلیت زنده مانی در هیپوکسی را داشته و استرس اکسیداتیو ایجاد مینمایند (8 و 10). پیشرفتهای تحقیقاتی روی جزئیات و مکانیسمهای کنترلی سلولهای ملانوما در چند دهه اخیر باعث روشن نمودن بسیاری از مسائل مبهم گردیده و راه برای استفاده هدفمند از آنزیمهای دخیل باز کرده و موجب ایجاد راههای عملی و کاربردی در مقابله با ملانوما گردیده. از این میان میتوان به تیروزیناز (E.C.1.14.18.1) اشاره نمود که تغییر در میزان فعالیت آن نقشی بسیار بنیانی در ایجاد اختلالاتی چون ملانوما، هایپرپیگمانتاسیون، آلبینیسم و پیبالدیسم دارد. این اختلالات غالبا در نتیجه هیدروکسیله شدن L-تیروزین به L‐DOPA در مرحله اول ملانوژنز و به دنبال آن اکسیداسیون کاتکولآمین به O-quinine میباشد (1-4، 11، 19و22).
همانطور که پیشتر اشاره گردیده، کاهش فعالیت تیروزیناز عامل ایجاد اختلالات پوستی شناخته شده و هدف قرار دادن این آنزیم میتواند برای جلوگیری و درمان ملانوما مفید باشد (14 و 34). تیروزیناز قارچ با منشاء Agaricus bisporus مدلی خوبی برای طراحی بازدارندهها و بررسی فعالیت این آنزیم کلیدی میباشد. با توجه به دردسترس بودن آن و شباهت ساختاری بالای آن به تیروزیناز پستانداران مدل بسیار مناسبی برای انجام چنین بررسیهایی میباشد. از بازدارندههای مختلف تیروزیناز از قبیل ریسورسینیل مویتی (Resorcinyl moiety)، حلقه تیازول (Thiazole ring) (28)، کوجیک اسید (kojic acid)، هیدروکوئینون (Hydroquinone)، آربوتین (Arbutin) (7 و 18)، گاما-توجاپلیسین (γ-thujaplicin) (35) و بنزویک اسید و مشتقات پیریدین (benzoic acid & pyridine derivatives) (16) اشاره نمود که از نظر بازدارندگی آنها روی بیشتولید ملانین مورد بررسی قرار گرفتهاند.
اسیدهای چرب غیراشباع به دلیل فعالیت ضد اکسیدانی بالا واجد خاصیت ضد سرطانی هستند. این نوع اسیدها بر اساس باندهای دوگانه به دوسته اسیدهای چرب چند اشباعنشده polyunsaturated fatty acids (PUFAs)) و اسیدهای چرب تک اشباع نشده (monounsaturated fatty acids) هر دو گروه دارای ویژگیهای مهمی هستند که باعث جلوگیری از بدخیمی غدد سرطانی میگردد. PUFAs متشکل از خانوادههای 3-n (امگا 3) و 6-n (امگا 6) میباشد که میتواند فعالیت ضد سرطانی در حالت درون شیشهای و درون جانداری داشته باشد (26، 30 و 32).
پیکولینیک اسید (PA) محصول طبیعی تجزیه تریپتوفان است که کرومیوم پیکولینات به عنوان یک مکمل رژیم غذایی برای کاهش وزن تجویز میگردد (14 و 19). PA عمدتا بهعنوان تشدید کننده پاسخهای ایمنی شناخته میشود (6، 8 و 10). اسید نیکوتینیک و آمید آن نیکوتین آمید رایج ترین اشکال ویتامین B نیاسین (ویتامین B3 ) که میتواند سطح کلسیم درون سلولی را به صورتی وابسته به زمان و غلظت کنترل نماید. علاوه بر این، غلظت نسبتاً بالای نیکوتینیک اسید (NA) بهواسطه القای تخریب بتا توبولین باعث تجزیه اسکلت سلولی میشود. از آنجا که اسکلت سلولی نقش حیاتی در مهاجرت سلولی ایفا می کند، این تجزیه اسکلت سلولی توسط نیکوتین اسید ممکن است روند متاستاز را مختل کند (3، 28 و 33).
با در نظر داشتن پتانسیل بالای NA و PA در درمانیهای بالینی به دلیل دخیل بودن آنها در روندها و مکانیسمهای بنیانی سلولی و ارائه دیدگاهی بهتر از نحوه عملکرد آنها در کنار اسید چرب امگا 3 روی کنترل آنزیم تیروزیناز در سلولهای سرطانی 375A- ملانوما به شیوههای مختلف در این مطالعه مورد بررسی قرار گرفتند. همچنین اثر کمپلکسهای NA و PA با اسید چرب امگا 3 بر میزان زندهمانی سلولهای سرطانی با آزمون MTT مورد بررسی قرارگرفت.
مواد و روشها
کشت سلول: رده سلولی A-375 ملانوما از مجموعه بانک سلولی انستیتو پاستور )تهران، ایران( خریداری شد. محیط DMEM حاوی ٪10سرم جنینی غیرفعال شده با گرما و 100U/ml پنی سیلین/استرپتومایسین برای کشت سلولها استفاده شد. پلیتهای کشت در دمای 37 درجه سانتیگراد تحت 5CO2 ٪ نگهداری شدند.
بررسی میزان بقا و تکثیر سلولی به روش MTT: برای تعیین میزان بقا و تکثیر سلولها از روش MTT (3-(4,5-Dimethylthiazol-2-yl)-2,5-Diphenyltetrazolium Bromide) بر اساس پروتوکل قبلی استفاده شد. به طور خلاصه، 2500 سلول از رده 375A- ملانوما در هر یک از چاهکهای پلیتهای 96 خانه کشت داده شد. پس از 24 ساعت انکوباسیون، سلولها در معرض غلظتهای مورد نظر از نیکوتینیک اسید-امگا 3 و پیکولینیک اسید-امگا 3 قرار گرفتند. آزمایشات برای هر گروه در سه تکرار و با گروه کنترل تیمار نشده در سه زمان مختلف 24، 48 و 72 ساعت انجام شد. پس از گذشت زمانهای مورد نظر، محیط کشت قبلی حذف و محیط μl200 DMEM %10، وFBS %10 ( mg/mL5) MTT (سیگما، ایالات متحده) اضافه شد. پس از انکوباسیون به مدت 4 ساعت دیگر، محصول فورمازون احیا یافته داخل سلولی با جایگزینی 100 میکرولیتر از محیط DMEM-1640 با همان حجم دی متیل سولفوکساید (DMSO) حل شد. مقادیر جذب در 570 نانومتر با دستگاه میکروپلیتریدر ( (BioTek, ELX800, USAاندازه گیری شد. غلظت مهار کننده نصف حداکثر (IC50) از هر آزمایش محاسبه شد.
آنالیز تراکم سلولها توسط میکروسکوپ معکوس: سلولهای 375A- ملانوما به تعداد 4×104 درون پلیـت 24 خانهای کشـت داده شـدند. پـس از گذشـت 24، 48 و 72 سـاعت از تیمار با دوزهای مختلف کمپلکسهای نیکوتینیک اسید-امگا 3 و پیکولینیک اسید-امگا 3، سـلول هـای گـروه کنتـرل و گروههای تحت تیماری مختلـف بـه دقـت در زیـر میکروسـکوپ معکوس (Leica, Germany) مورد بررسی قرار گرفتند.
آنالیز سنتیکی بازدارندگی MT: سینتیک بازدارندگی با استفاده از غلظتهای مختلف L-DOPA (10-2.5 میلیگرم در میلیلیتر)، P-ALA و N-ALA (0، 4، 8، 12، 16 میلیمولار) ارزیابی شد، غلظت تیروزیناز 40 واحد بود. حالت مهاری و پارامترهای جنبشی توسط معادله Line weaver-Burk در یک شکل متقابل دو برابر معادله (1) (27)، که در آن km ثابت Michaelis است. v و V max به ترتیب سرعت واکنش اولیه و حداکثر سرعت واکنش را مشخص می کنند، و [S] غلظت سوبسترا را نشان می دهد:
(1)
ثابت اتصال برای آنزیم آزاد (Kic) از طریق نمودار خطی دیکسون معادله به دست آمد. (2) 1/v در مقابل[I]، که در آن (I) نشان دهنده غلظت بازدارنده است:
(2)
ثابت اتصال برای کمپلکس سوبسترا-آنزیم (Kiu) از طریق نمودار خطی Cornish-Bowden-Eisenthal معادله (3) (9) از (V/S) در مقابل [I] توصیف شد:
(3)
آنالیز آماری: کلیه نتایج حاصل از این مطالعه در رابطه با MTT با استفاده از روشهای آماری one way مورد تجزیه و two way ANOVA و ANOVA در نرمافزار SPSS 28 (IBM, Armonk, NY, USA) تحلیل قرار گرفته و نمودارها در هر دو مورد با استفاده از نرم افزار Prism 9.0 (GraphPad Software, San Diego, CA, USA)، با سطح معنی داری 01/0 و 05/0p< گزارش شدند.
نتایج
در بررسی اثر غلظتهای مختلف (200-0 میکرومولار) کمپلکسهای پیکولینیک اسید-امگا 3 و نیکوتینیک اسید-امگا 3 تحت تیمارهای زمانی مختلف 24، 48 و 72 ساعت، شاهد اثر معنیدار این کمپلکسها بر کاهش تکثیر و رشد سلولی بودیم. سلولهای تحت تیمار 24 ساعت با غلظتهای مختلف پیکولینیک اسید-امگا-3، مهار رشد سلولهای سرطانی ملانوما با افزایش غلظت نشان دادند ولی این افزایش مهار تنها از سطح 150 میکرومولار به بعد مشاهده گردید و تفاوت معنیداری را در سطح 01/0 >p حادث گردید (شکل 1). روند مشابهی در تیمار زمانی 48 مشاهده شد ولی با افزایش فاکتور زمان، سطح غلظت 125 میکرومولار نیز مهار معنیدار (05/0 >p) رشد سلولی را نشان داد. بیشترین مهارکنندگی رشد سلولی تحت تیمار با کمپلکس پیکولینیک اسید-امگا 3 در شرایط زمانی 72 ساعت مشاهده گردید، چراکه غلظت 100 میکرومولار این کمپلکس توانست رشد سلولهای ملانوها A-375 را به شکل معنیداری (05/0 >p) مهار نماید. دیگر سطحها، 200-125 میکرومولار نیز مشابه دو تیمار زمانی قبلی باعث مهار معنیدار سلولهای سرطانی گردیدند (شکل 1).
شکل 1- آنالیز بقای سلولها پس از در معرض قرار گرفتن با غلظتهای مختلف کمپلکس پیکلولینیک اسید-امگا-3. به تیمارهای زمانی در شکلها اشاره گردیده. علامت ستاره اشاره به اختلاف معنیدار در سطح 5 (*) و 1 (**) درصد دارد.
واکنش سلولهای سرطانی ملانوما به نیکوتینیک اسید- امگا 3 کمپلکس تحت تیمارهای زمانی نامبرده در بالا تا حدی متفاوت از کمپلکس پیکولینیک اسید-امگا 3 بود. در تیمار زمانی 24 ساعت، اثری وابسته به غلظت در توان مهارکنندگی کمپلکس نیکوتینیک اسید- امگا 3 مشاهده گردید (شکل 2)، همانند کمپلکس قبلی، ولی این روند کاهش در نیکوتینیک اسید- امگا 3 کم نوسانتر بود و صرفا بیشترین غلظت به کاربرده شده (200 میکرومولار) توانست مهارکنندگی معنیداری (05/0 >p) را نشان دهد. با افزایش زمانی به 48 ساعت، این کمپلکس توانست مهارکنندگی معنیداری رو سلولهای سرطانی در غلظتهای پایینتر 175 و 150 میکرومولار داشته باشد. روند مشابهی در تیمار 72 ساعت مشاهده گردید، دال بر اینکه افزایش زمان اثری بر افزایش توان مهارکنندگی غلظتهای پایینتر کمپلکس نیکوتینیک اسید- امگا 3 ندارد (شکل 2). تغییرات در تراکم سلولهای A375 ملانوما قبل و بعد از تیمار با غلظتهای مختلف کمپلکسهای نیکوتینیک اسید- امگا 3 و پکلینیک اسید-امگا 3 نیز می تواند در تصاویر میکروسکوپی مشاهده گردد (شکل 3).
پارامتر سنتیکی کمپلکسهای نیکوتینیک اسید-امگا 3 و پیکولینیک اسید-امگا 3 روی تیروزیناز قارچ مورد بررسی قرار گرفته و ویژگیهای سنتیکی با استفاده از نمودار مقایسهای لینویور-برک به دست آمد. نتایج حاصل نشان میدهد که افزایش بازدارنده موجب ایجاد خطوط مختلفی میگردد که دارای شیب بوده و از محور Y میگذرد (شکل A, B4). مقدار Ki نمودار دوم لینویور-برک (شکل A, B4) و معادله 1 حاصل گردید. نوع بازدارندگی آنزیم به ترتیب در نیکوتینیک اسید-امگا 3، 134/0=Vmax و 19/0=Km، 2/5=Ki و در پیکولینیک اسید-امگا 3، 14/0=Vmax و 19/0=Km، 1/5=Ki رقابتی بود.
شکل 2- آنالیز بقای سلولها پس از در معرض قرار گرفتن با غلظتهای مختلف کمپلکس نیکوتینیک اسید-امگا-3. به تیمارهای زمانی در شکلها اشاره گردیده. علامت ستاره اشاره به اختلاف معنیدار در سطح 5 (*) و 1 (**) درصد دارد.
5 |
4 |
1 |
3 |
2 |
شکل 3- عکسهای میکروسکوپ نوری (احتمالاً) فاز-کنتراست تغییرات در تراکم سلولهای سرطانی رده 375A- ملانوما تحت تیمارهای 1) کنترل 2) 50 میکرومولار 3) 200 میکرومولار نیکوتینیک اسید- امگا3 و در تیمارهای زمانی 48 و 72 ساعت. عکسهای 5 و4 اثر غلظتهای 4) 50، 5) 200 میکرومولار، پیکولینیک اسید-امگا 3 به ترتیب در 48 و 72 ساعت نشان میدهد.
A |
B |
شکل 4- نمودار مقایسهای لینویور-برک آزمون سنتیکی تیروزیناز قارچ روی کمپلکسهای نیکوتینیک اسید-امگا 3 و پکولینیک اسید-امگا 3. L‐DOPA بهعنوان سوبسترا در نظر گرفته شد. واکنش در 10 میلیمولار PBS، 8/6 pH، در دمای oC 25 و 40 واحد آنزیم در حضور غلظتهای مختلف از کمپلکس نیکوتینیک اسید-امگا 3 (A): (نیلی) 0، (نارنجی) 4، (خاکستری) 8، (زرد) 12 و (آبی) 16 میلیمولار؛ کمپلکس پیکولینیک اسید-امگا 3: (B): (نیلی) 0، (نارنجی) 4، (خاکستری) 8، (زرد) 12 و (آبی) 16 میلیمولار. پلاتهای ثانویه، شیب در مقابل غلظتهای مختلف بازدارنده، که ثابت بازدارنده (Ki) را از نقاط طولی ارائه میدهد.
بحث
اسیدهای چرب اشباع، تک غیراشباع و ترانس در صورت مصرف در مقادیر زیاد با به خطر انداختن ایمنی سلولی، خطر ابتلا به سرطان را افزایش میدهند (12). در مقابل، PUFAهای امگا 3 عملکرد ایمنی سلولی را بهبود میبخشد و بروز تومور را کاهش میدهند و موجب افزایش بیان TNF-a میگردد. همچنین سطح گونههای فعال اکسیژن را سرکوب میکنند و بر متابولیسم مواد مغذی در سلولهای سرطانی تأثیر میگذارند (14 و 35). نیکوتینیک اسید از رگزایی از طریق بازسازی اسکلت سلولی جلوگیری
میکند. که نشان میدهد سنتز ALA به عنوان امگا 3 و اسید نیکوتینیک به عنوان یک مشتق جدید، ممکن است عوامل شیمیایی پیشگیری کننده و درمانی ایمن برای انواع خاصی از سرطانها باشند (21، 23 و 31). مطالعه قبلی ما بر روی سنتز مشتقات اسید چرب غیراشباع چندگانه و تأثیر مشتقات کریزین امگا-3 و -6 که مهارکنندههای آنزیم تیروزیناز هستند که در ملانوما بیش از حد بیان میشوند، متمرکز بود. اسیدها و ترکیبات پیریدین به عنوان مهارکنندههای درمانی بالقوه بر روی آنزیم تیروزیناز و رده سلولی ملانوما 375-A تاثیرگذاری قابل توجهی را نشان دادند. غلظتهایی که در آن مهارکنندهها تراکم سلولی را تا 50 درصد کاهش دادند، (IC50) به ترتیب در 61/2 و 42/2 میلیمولار برای اسیدهای نیکوتین و پیکولینیک به دست آمد (16).
ترکیب عوامل ضد سرطانی برای افزایش یا از بین بردن معایب ترکیبات مورد استفاده در فرایند درمان سرطان، یک رویکرد ثابت شده برای شیمی درمانی سرطان است (24). همانطور که در نتایج سنجش MTT در شکل 2 ذکر شد، IC50 مشاهده شده برای نیکوتینیک اسید-امگا 3 در رده سلولی ملانوما 375-A برای سه تیمار زمانی 24، 48 و 72 ساعت به ترتیب 5/161، 3/149 و 2/145μM و برای پیکولینیک اسید-امگا 3، 4/141، 8/132 و 9/123μM بود، که بر اثر ضد تکثیری بیشتر این مشتقات را در مقایسه با هر کدام از ترکیبات به تنهایی تاکید مینماید. مالیخان و همکاران نیز در بررسی اثر مشتقات نیکوتینیک اسید-امگا 3 روی سلولهای سرطانی ملانوما سطح IC50 مشابهی را شامل 7/166، 2/144 و 1/146 μM در سه تیمار زمانی 24، 48 و 72 گزارش نمودند (28). بهطورکلی، در بررسی حاضر، مشتقات پیریدین (اسیدهای نیکوتین و پیکولینیک) به همراه امگا 3 داری تاثیرگذاری قابل توجه و IC50 پایینتر نیز نسبت به مطالعات پیشین بودند، بدین معنا که در غلظت پایینتری توانستند موجب کاهش 50% تراکم سلولهای سرطانی گردند. در مطالعه ای مشابه، هی و همکاران (19) با افزودن دو مولکول نیاسین مشتقی از کورکومین تولید کرد که فراهمی زیستی را بهبود بخشید و عملکرد ضد تکثیر قابل توجهی را در برابر ردههای سلولی سرطانی روده بزرگ (HCT116)، پستان (MCF-7) و نازوفارنکس (CNE2, 5- 8F و 6-10B) نشان داد. علاوه بر این، القای آپوپتوز علاوه بر توقف چرخه سلولی در فاز G2/M با مکانیسم با واسطه p53 است که رویکرد اصلی این مشتق میباشد در حالیکه گزینش پذیری بالایی را نیز حفظ مینماید.
ما این مشتق از اسید نیکوتین را برای بهبود فراهمی زیستی و کارایی حمل و نقل آن سنتز کردیم. این اصلاح ساختاری مولکولی احتمالاً جذب روده ای آن را افزایش می دهد. نیکوتینیک اسید و نیکوتین آمید آدنین دی نوکلئوتید (NADC) دو پیش ساز نیاسین هستند. این دو ترکیب بهعنوان بستری از آنزیمهای تجزیهکننده NADC مانند پلی پلیمرازهای (ADP-ribose) (PARPs)، CD38 و سیرتوئینها عمل میکنند. علاوه بر این، تجزیه NADC توسط PARP1/2 به تولید PAR و ترمیم DNA اجازه می دهد و از طریق آسیب DNA، فعالیت PARP1/2 منجر به مرگ سلولی توسط آپوپتوز می شود، بنابراین نیاسین به عنوان یک عامل پیشگیری بالقوه از سرطان پوست میتواند در فرایند درمان در نظر گرفته شود. برای فعالیت مونوفنولاز، اسید 2 آمینو بنزوئیک و اسید 4 آمینه بنزوئیک فعالیت آنزیم را به صورت غیر رقابتی مهار کردند، در حالی که اسید نیکوتینیک و اسید پیکولینیک به طور رقابتی فعالیت آنزیم را محدود کردند (3، 7 و 8).
نتایج مطالعه ما نشان داد که نیکوتینیک اسید-امگا 3 و پیکولینیک اسید-امگا 3 باعث مهار فعالیت MT و بی ثباتی فیزیکوشیمیایی آن میشوند. نمودارهای مقایسهای لینویور-برک الگوهای مختلفی از مهار رقابتی را برای هر دو کمپلکس نشان میدهد. پیشتر گزارش گردیده که حالت مهاری مهارکنندههای فلاونول معمولاً مهار رقابتی برای اکسیداسیون L-DOPA توسط تیروزیناز و پارهمولکول 3-هیدروکسی-4-کتو فلاونول است و ساختار نقش کلیدی در شلاته کردن مس دارد. ارزیابی سنتیکی فعالیت آنزیم در حضور نیکوتینیک اسید-امگا 3 و پیکولینیک اسید-امگا 3 یک شیوه رقابتی مهار را با ثابت مهاری (Ki) به ترتیب 2/5 و 1/5 میلیمولار برای نیکوتینیک اسید-امگا 3 و پیکولینیک اسید-امگا 3 القا نمود. در مطالعات قبلی، کمپلکسهای Chyrsin به همراه امگا 3 و 6 یک اثر بازدارنده رقابتی بر MT با مقادیر Ki 45/0 و 29/0 میلیمولار نشان دادند و فعالیت اسید نیکوتنیک و پیکولینیک اسید به ترتیب دارای Ki 4/2 و 93/2 میلی مولار و 93/2 میلی مولار بودند (16, 21). مهار فعالیت تیروزیناز ممکن است به گروه های هیدروکسیل روی ترکیبات فنلی فلاونوئیدها بستگی داشته باشد که با آنزیم پیوند هیدروژنی ایجاد نمایند و موجب القای بازدارندگی رقابتی و نهایتا منجر به کاهش فعالیت آنزیمی میگردند (5 و 25). چندین مطالعه نشان داده است که اسیدهای چرب اشباع و غیر اشباع اثرات مهاری بر فعالیت تیروزیناز دارند. تغییرات در فعالیت با افزایش اسیدهای چرب غیر اشباع ممکن است تخریب تیروزیناز توسط کمپلکس پروتئازوم را افزایش دهد، در حالی که افزایش اسیدهای چرب اشباع شده اثر معکوس دارد (15, 16). جمالی و همکاران در مطالعه ای نشان دادند که اثر بازدارندگی ترکیبی اسیدهای چرب بهتر از حالت جداگانه آنها میباشد (21). آنالیز سینتیکی کمپلکسهای این مطالعه نشان داد که مهار آنزیم تیروزیناز رقابتی بود (شکل A,B4)، این یافته در موافقت با نتیجه گرفته شده توسط غیبی و همکاران بر روی نیکوتنیک و پیکولینیک اسید میباشد (16).
نتیجه گیری
به طور کلی، کمپلکسهای تازه طراحی شده نیکوتینیک اسید-امگا 3 و پیکولینیک اسید-امگا 3 اثرات ضد تکثیری بر رده سلولی 375-A ملانوما را بهصورتی وابسته به غلظت و زمان را نشان دادند. نیکوتینیک اسید IC50 پایینتری در مقایسه با اسید نیکوتین به تنهایی و همراه با امگا 3 به همراه داشت. و این ویژگی مولکولی باعث بیشتر شدن فراهمی زیستی نیکوتینیک اسید-امگا 3 در سلولهای تیمار شده گردیده و بر همین اساس این کمپلکس قابلیت بیشتری در کاهش تراکم سلولهای سرطانی را داشت. عکسهای میکروسکوپی نیز نشان داد سلولهای سرطانی تحت تیمارهای مختلف کاهش تراکم داشتهاند. در راستای تغییرات سینتیکی با استفاده از نمودار لینویور-برک، کمپلکسها موجب القای ناپایداری ترمودینامیکی و تغییرات ساختاری در MT شدند. این کمپلسها، میتواند برای بررسی بیشتر پیشنهاد شودند و در مطالعات پیشرو به عنوان یک مکمل شیمی درمانی پیشگیری کننده اختلالات پوستی و سرطان در نظر گرفته شوند.
1- افشار، ص، نعمت پور، ف، شیرزاد، امیر. 1400. " تغییرات بیان ژن آدنوزین دآمیناز (ADA ) در سلولهای سرطان پستان انسانی ردههای 7-MCF و 231-MB-MDA و سلولهای رده نرمال 10A-MCF تیمار شده با عصاره شیرین بیان" مجله پژوهشهای سلولی و مولکولی(مجله زیست شناسی ایران). جلد 34. شماره 4. ص: 318-304.
2- صفریان، ش، عرفانی،آ. 1400. " بررسی شیوع دو جهش در ژن FLT3 در میان بیماران مبتلا به لوسمیهای حاد میلوئیدی با کاریوتایپ طبیعی در شمال شرق ایران " مجله پژوهشهای سلولی و مولکولی(مجله زیست شناسی ایران).جلد 34. شماره 4. ص: 652-638.
12- Freitas, R.D.S. and M.M. Campos., 2019. Protective Effects of Omega-3 Fatty Acids in Cancer- Related Complications. Nutrients, 11(5).
13- Friedman, M., 2018. Analysis, Nutrition, and Health Benefits of Tryptophan. International Journal of Tryptophan Research, 11:1178646918802282.
14- Funayama, M., Arakawa, H., Yamamoto, R., Nishino, T., Shin, T., Murao, S., 1995. Effects of α-and β-arbutin on activity of tyrosinases from mushroom and mouse melanoma. Bioscience, biotechnology, and biochemistry. 59(1):143-144.
15- Gheibi, N., Saboury, A., Haghbeen, K., Rajaei, F., and Pahlevan, A., 2009. Dual effects of aliphatic carboxylic acids on cresolase and catecholase reactions of mushroom tyrosinase. Journal of enzyme inhibition and medicinal chemistry, 24(5): 1076-1081.
16- Gheibi, N., Taherkhani, N., Ahmadi, A., Haghbeen, K., and Ilghari, D., 2015. Characterization of inhibitory effects of the potential therapeutic inhibitors, benzoic acid and pyridine derivatives, on the monophenolase and diphenolase activities of tyrosinase. Iranian journal of basic medical sciences, 18(2): 122-129.
17- Grant, R. S., Coggan, S. E., and Smythe, G. A., 2009. The physiological action of picolinic Acid in the human brain. International journal of tryptophan research, 2:71-79.
18- Ha, Y. M., Chung, S. W., Song, S., Lee, H., Suh, H., and Chung, H. Y., 2007. 4-(6-Hydroxy-2-naphthyl)-1, 3-bezendiol: a potent, new tyrosinase inhibitor. Biological and Pharmaceutical Bulletin, 30(9): 1711-1715.
19- Han, H. J., Park, S. K., Kang, J. Y., Kim, J. M., Yoo, S. K., and Heo, H. J., 2020. Anti-melanogenic effect of ethanolic extract of Sorghum bicolor on IBMX–induced melanogenesis in B16/F10 melanoma cells. Nutrients, 12(3): 832.
20- Hassani, S., Haghbeen, K., and Fazli, M., 2016. Non-specific binding sites help to explain mixed inhibition in mushroom tyrosinase activities. European Journal of Medicinal Chemistry, 122: 138-148.
21- He, Y.C., He, L., Khoshaba, R., Lu, F.G., Cai, C., Zhou, F.-l., Liao, D.-f., and Cao, D., 2019. Curcumin nicotinate selectively induces cancer cell apoptosis and cycle arrest through a P53-mediated mechanism. Molecules, 24(22): 4179.
21- Jamali, Z., Rezaei Behbehani, G., Zare, K., and Gheibi, N., 2019. Effect of chrysin omega‐3 and 6 fatty acid esters on mushroom tyrosinase activity, stability, and structure. Journal of food biochemistry, 43(3): e12728.
22- Ji, Y., Dai, F., Yan, S., Shi, J.Y., and Zhou, B., 2019. Identification of catechol-type diphenylbutadiene as a tyrosinase-activated pro-oxidative chemosensitizer against melanoma A375 cells via glutathione S-transferase inhibition. Journal of agricultural and food chemistry, 67(32): 9060-9069.
23- Jing, K., Song, K.S., Shin, S., Kim, N., Jeong, S., Oh, H.R., Park, J.H., Seo, K.-S., Heo, J.Y., Han, J., Park, J.I., Han, C., Wu, T., Kweon, G.-R., Park, S.K., Yoon, W.H., Hwang, B.D., and Lim, K., 2011. Docosahexaenoic acid induces autophagy through p53/AMPK/mTOR signaling and promotes apoptosis in human cancer cells harboring wild-type p53. Autophagy, 7(11): 1348-1358.
24- Kiesewetter, B., Simonitsch-Klupp, I., Mayerhoefer, M. E., Dolak, W., Lukas, J., and Raderer, M., 2020. First Line Systemic Treatment for MALT Lymphoma-Do We Still Need Chemotherapy? Real World Data from the Medical University Vienna. Cancers, 12(12): 3533.
25- Kim, Y. J., Kang, K. S., and Yokozawa, T., 2008. The anti-melanogenic effect of pycnogenol by its anti-oxidative actions. Food and chemical toxicology, 46(7): 2466-2471.
26- Li, J., Chen, C.Y., Arita, M., Kim, K., Li, X., Zhang, H., and Kang, J. X., 2018. An omega-3 polyunsaturated fatty acid derivative, 18-HEPE, protects against CXCR4-associated melanoma metastasis. Carcinogenesis, 39(11): 1380-1388.
27- Lineweaver, H., and Burk, D., 1934. The Determination of Enzyme Dissociation Constants. Journal of the American Chemical Society, 56(3): 658-666
28- Malikhan, H., Siasi Torbati, E., Majd, A., and Gheibi, N., 2021. Anti-Cancer Properties of Nicotinic Cid-Alpha Linolenic Acid Derivative on A375 Melanoma Cell Line: Assessment of Apoptosis and WNT Signaling Pathways. Middle East Journal of Cancer.
29- Miura, K., Way, M., Jiyad, Z., Marquart, L., Plasmeijer, E. I., Campbell, S., Isbel, N., Fawcett, J., Ferguson, L. E., and Davis, M., 2021. Omega-3 fatty acid intake and decreased risk of skin cancer in organ transplant recipients. European Journal of Nutrition, 60(4): 1897-1905.
30- Newell, M., Mazurak, V., Postovit, L. M., and Field, C. J., 2021. N-3 Long-Chain Polyunsaturated Fatty Acids, Eicosapentaenoic and Docosahexaenoic Acid, and the Role of Supplementation during Cancer Treatment: A Scoping Review of Current Clinical Evidence. Cancers, 13(6): 1206.
31- Saini, R. K., and Keum, Y.S., 2018. Omega-3 and omega-6 polyunsaturated fatty acids: Dietary sources, metabolism, and significance—A review. Life sciences, 203: 255-267.
32- Scatozza, F., Moschella, F., D’Arcangelo, D., Rossi, S., Tabolacci, C., Giampietri, C., Proietti, E., Facchiano, F., and Facchiano, A., 2020. Nicotinamide inhibits melanoma in vitro and in vivo. Journal of Experimental and Clinical Cancer Research, 39(1): 1-17.
33- Skoniecka, A., Cichorek, M., Tyminska, A., Pelikant-Malecka, I., and Dziewiatkowski, J., 2021. Melanization as unfavorable factor in amelanotic melanoma cell biology. Protoplasma 21: 1-14.
34- Vanjare, B. D., Mahajan, P. G., Dige, N. C., Raza, H., Hassan, M., Han, Y., Kim, S. J., Seo, S.Y., and Lee, K. H., 2021. Novel 1, 2, 4-triazole analogues as mushroom tyrosinase inhibitors: synthesis, kinetic mechanism, cytotoxicity and computational studies. Molecular diversity, 25(4): 2089-2106.