بررسی تنوع ژنتیکی ژنوتیپ های مختلف گز استان اردبیل با استفاده از نشانگرهای مولکولی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
1 کارشناسی ارشد علوم باغبانی، دانشگاه محقق اردبیلی
2 دانشگاه محقق اردبیلی- گروه علوم باغبانی
3 استاد گروه علوم باغبانی، دانشگاه محقق اردبیلی
4 استادیار گروه علوم باغبانی دانشگاه محقق اردبیلی
چکیده
گیاه گز با 13 گونه بومی ایران از تیره Tamaricaceae بوده و از گیاهان زینتی فضای سبز نیز محسوب می‌شود. گزها به دلیل مقاومت به شرایط سخت آب و هوایی و سازگاری با شوری بالا، مورد توجه قرار گرفته است. مطالعه تنوع ژنتیکی و صفات ژنوتیپ‌های گوناگون در نقاط مختلف جغرافیایی، اطلاعات مفید و ضروری برای به‌گزینی و اصلاح ارقام مورد نظر برای توسعه کشت و کار بهینه فراهم می‌نماید. از این رو، این تحقیق به منظور بررسی تنوع‌ ژنتیکی ژنوتیپ‌های گز بومی اردبیل انجام گرفت. در تحقیق حاضر، برگ‌های جوان نه جمعیت از این گونه از نمونه‌های تازه رویشگاه‌های طبیعی اردبیل جمع‌آوری و ساختار ژنتیکی آن‌ها با استفاده از 13 نشانگر ISSR و 5 نشانگر SCOT مورد بررسی قرار گرفت. نتایج بدست آمده نشان داد، کل باندهای ایجاد شده توسط نشانگر ISSR تعداد 96 باند بود که بیش‌ترین آنها توسط آغازگر UBC810،UBC826 و UBC855 تکثیر شد. میانگین اطلاعات چندشکلی 30/34 درصد بود که بیش‌ترین چندشکلی مربوط به UBC814، UBC855 و UBC826 به میزان100% بود. ژنوتیپ‌ها در دندروگرام به چهار گروه تقسیم‌بندی شد. همچنین با استفاده از SCOT در مجموع 32 باند تکثیر شد. بیش‌ترین و کم‌ترین تعداد باند به ترتیب از SCoT4 و SCoT1 به‌دست آمد. نتایج این پژوهش نشان داده که نشانگر ISSR در تفکیک ژنوتیپ‌ها از یکدیگر براساس منطقه جغرافیایی موفق بود. همچنین هر دو آغازگز در تعیین میزان تنوع ژنتیکی و روابط خویشاوندی نمونه‌های جمعیتی مورد مطالعه گز از کارآیی بالایی برخوردار بودند.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


عنوان مقاله English

Investigation on the Genetic Diversity in Different Salt cedar Ecotypes of Ardabil Province by Molecular Markers

نویسندگان English

Gita vakili 1
Younes Pourbeyrami hir 2
‪Esmaeil Chamani 3
asghar estaji 4
1 Department of Horticultural Sciences, University of Mohaghegh Ardabil
2 Ardabili Mohaghegh University, Dep. Of Hoyrticulture
3 Department of Horticultural Sciences, University of Mohaghegh Ardabili
4 Associate Professor, Department of Horticultural Sciences, University of Mohaghegh Ardabili, Ardabil, Iran
چکیده English

Tamarix is belonging to the Tamaricaceae family with 13 indigenous species of Iran and is one of the important ornamental plants in the landscape. This plant has been considered due to its resistance to the different weather and compatibility with salinity condition. In this study was conducted to investigate genetic diversity of different tamarix genotype endemic in the Ardebil province. The young leaves of 9 tamarix population were collected from natural habitats of this plant in Ardebil province to evaluate the genetic diversity. The leaves DNA were extracted using CTAB method. In this investigation 13 ISSR and 5 SCOT primers were used. A total number of 96 bands were produce by ISSR primers and the highest numbers of bands were amplified by UBC810- UBC826- UBC855. The average percentage polymorphism loci (PPL) was 6.75%, the highest polymorphism with the amount of 100% was in UBC814- UBC826 and UBC855 primers. The dendrogram was drowned based on WARD technique and genotypes classified into four main clusters. Also, a total of 32 band amplified by SCoT primer. The highest and lowest number of bands was obtained from SCoT4 and SCoT1, respectively. The average polymorphism percentage was 75.8%. In general, the results obtained from this study indicate that ISSR and SCoT primers were useful to separate the geographical region of genotypes. These primers also were highly efficient to determine the genetic diversity and relationship of studied tamarix populations. Hence, the use of these primers in other genetic studies like QTL and association mapping are recommended.

کلیدواژه‌ها English

Cluster Analysis
SCoT
ISSR
Tamarix
Polymorphism

بررسی تنوع­ ژنتیکی ژنوتیپ­های مختلف گز استان اردبیل با استفاده از

نشانگرهای مولکولی

گیتا وکیلی عباسعلیلو، یونس پوربیرامی­هیر*، اسماعیل چمنی و اصغر استاجی

ایران، اردبیل، دانشگاه محقق اردبیلی، گروه  علوم باغبانی

تاریخ دریافت: 07/12/1400          تاریخ پذیرش: 11/07/1401

چکیده

گیاه گز با 13 گونه بومی ایران از تیره Tamaricaceae بوده و از گیاهان زینتی برای فضای سبز نیز محسوب می­شود. گزها به دلیل مقاومت به شرایط سخت آب و هوایی و سازگاری با شوری بالا، مورد توجه قرار گرفته است. مطالعه تنوع ژنتیکی و صفات ژنوتیپ­های گوناگون در نقاط مختلف جغرافیایی، اطلاعات مفید و ضروری برای به­گزینی و اصلاح ارقام مورد نظر برای توسعه کشت و کار بهینه فراهم می­نماید. از این رو، این تحقیق به منظور بررسی تنوع­ ژنتیکی ژنوتیپ­های گز بومی اردبیل انجام گرفت. در تحقیق حاضر، برگ­های جوان نه جمعیت از این گونه از نمونه­های تازه رویشگاه­های طبیعی اردبیل جمع­آوری و ساختار ژنتیکی آن­ها با استفاده از  13 نشانگر ISSR و 5 نشانگر SCOT مورد بررسی قرار گرفت. نتایج بدست آمده نشان داد، کل باندهای ایجاد شده توسط نشانگر ISSR تعداد 96 باند بود که بیش­ترین آنها توسط آغازگر UBC810،UBC826  و UBC855 تکثیر شد. میانگین اطلاعات چندشکلی 30/34 درصد بود که بیش­ترین چندشکلی مربوط به UBC814، UBC855 و UBC826 به میزان100% بود. ژنوتیپ­ها در دندروگرام به چهار گروه تقسیم­بندی شد. همچنین با استفاده از SCOT در مجموع 32 باند تکثیر شد. بیش­ترین و کم­ترین تعداد باند به ترتیب از SCoT4 و SCoT1 به­دست آمد. نتایج این پژوهش نشان داده که نشانگر ISSR در تفکیک ژنوتیپ­ها از یکدیگر براساس منطقه جغرافیایی موفق بود. همچنین هر دو آغازگز در تعیین میزان تنوع ژنتیکی و روابط خویشاوندی نمونه­های جمعیتی مورد مطالعه گز از کارآیی بالایی برخوردار بودند.

واژه های کلیدی: گز (Tamarix)، آنالیز خوشه­ای، SCoT، ISSR، چندشکلی

* نویسنده مسئول، پست الکترونیکی: younes_ph62@uma.ac.ir

مقدمه

 

تیره Tamaricaceae خانواده­های نسبتاً کوچک از گیاهان درختی و درختچه­ای می­باشد با جنس­های متعددی بوده که یکی از جنس­های آن Tamarix است. گونه­های مختلف این تیره بیشتر در مناطق معتدل و نیمه­گرمسیری و نواحی نمکی، خشک و بیابانی دیده­ می­شود (1). گیاه گز دارای 90 گونه در سراسر جهان و 35 گونه در فلات ایران می­باشد. در ایران حدود 13 گونه گز وجود دارد اغلب آن­ها مخصوص نواحی استپی و شوره­زارها می­باشد و معدودی نیز مخصوص نواحی حاره است (12). گز در مناطق مختلف کشور برای مثال در آذربایجان، کرمان، تهران، لرستان، گرگان، سیستان و بلوچستان، سمنان، اردبیل و اصفهان دیده می­شود (7). تولید بذرهای فراوان و همچنین گرده­افشانی با حشرات یا باد یکی از مزیت­های پراکنش وسیع این گیاه است. گونه­های مختلف گز به­عنوان کنترل­کننده سیلاب و بادهای شدید مورد استفاده قرار می­گیرد و توانایی بالا در تحمل تنش­های محیطی دارد و همچنین به دلیل داشتن ریشه­های گسترده از نمونه­های موفق تثبیت خاک در مناطق بیابانی و تپه­های ماسه­ای به حساب می­آید (12).

مطالعه­ی تنوع ژنتیکی و صفات ژنوتیپ­های گوناگون در نقاط مختلف جغرافیایی، اطلاعات مفید و ضروری برای به­گزینی و اصلاح ارقام مورد نظر برای توسعه کشت و کار بهینه فراهم می­نماید. مطالعه تنوع ژنتیکی از طریق روش ریخت­شناسی، نشانگر مولکولی و بیوشیمیایی امکان­پذیر است. بررسی تنوع ژنتیکی با روش­های ریخت­شناسی و بیوشیمیایی دارای محدودیت­هایی می­باشد و به همین دلیل نشانگرهای مولکولی برای مطالعه­ی تنوع ژنتیکی مفیدترند. نشانگر مولکولی ISSR (Inter Simple Sequence Repeat) به دانش قبلی از ژنوم و روش­های طراحی آغازگرهای خاص نیاز ندارد. در این نشانگر از یک سری آغازگرهای منفرد جهت ایجاد قطعات استفاده می­شود. از جمله مزایای آغازگر ISSR، می­توان به چندشکلی بالا، سریع و قابل استفاده برای تعداد زیادی نمونه و هزینه پایین (8، 6) و همچنین مستقل از تغییرات محیطی (5، 22) اشاره کرد. علاوه بر آن، نشانگر ISSR قابلیت تکرارپذیری بالاتری نسبت به نشانگرهایی مانند RAPD داشته و همچنین استفاده از آن آسان است (19 ، 23). نشانگر SCoT (Potential of Start Codon Targeted)، یا کدون­های آغاز هدف واقع شده، روشی است که در آن پرایمرها بر اساس توالی­های آغازگر (ATG) طراحی شده و نواحی بین کدون­های آغازگر طی واکنش زنجیرهای پلیمراز تکثیر می­شود و تفاوت­ها آشکار می­شود (فرشادفر)، این نشانگر مولکولی مناسبی برای بررسی تنوع ژنتیکی در گیاهان است، این نشانگر برای مطالعه تنوع ژنتیکی در گونه­های زراعی زیادی مانند سیب­زمینی، خرما، انگور، پرتقال و غیره مورد استفاده قرار گرفته است. همچنین SCoT روشی سریع، با کارایی بالا، قابل اطمینان و با تکرار پذیری است (12). نشانگر SCoT حتی به سطوح پایین تغییرات ژنتیکی نیز حساس است. بنابراین این نشانگر برای آنالیز ژنتیک جمعیت در طیف وسیعی از گیاهان گزینه مناسبی محسوب می­شود.

تیموری و شیدایی (1393) بررسی ساختار ژنتیکی جمعیت­های گونه­های گز و همچنین میزان تنوع ژنتیکی موجود در بین جمعیت­های یک گونه جهت برنامه­ریزی تنوع ژنتیکی برای شناسایی، حفظ و نگهداری ذخایر توارثی و همچنین انجام تلاقی­های انتخابی بسیار ضروری دانستند. لذا نمونه­های گز بومی در شش جمعیت جغرافیایی مختلف واقع در استان سیستان و بلوچستان با توجه به تنوع ژنتیکی و دوری و نزدیکی جمعیت­ها با استفاده از نشانگرهای ISSR مورد مطالعه قرارگرفت. آنها از نتایج بدست آمده برای بررسی فاصله ژنتیکی ژنوتیپ­های مختلف استفاده کردند. با مشخص شدن فاصله ژنتیکی بین ژنوتیپ­ها و ارقام یک گونه می­توان والدینی که فاصله ژنتیکی بیشتری دارند جهت بدست آمدن نتاج برتر انخاب کرد (11). آگاهی تنوع ژنتیکی جمعیت­ها نه تنها فرآیندهای تکامل و مکانسیم آن را بررسی می­کند، بلکه اطلاعات مفیدی را در مورد حفاظت بیولوژیکی فراهم می­نماید، یک رویکرد مهم در اصلاح نباتات افزایش تنوع ژنتیکی بین ژنوتیپهای والدینی برای تلاقی است (4). شاغولی و همکاران (1395) تنوع مولکولی شش جمعیت از دو گونه T. Androsswii وT. Szowitsiana از رویشگاه استان سمنان با استفاده از نشانگرهای ISSR را مورد بررسی قرار دادند. از میان آغازگرهای مورد استفاده سه مورد موفق به ایجاد باندهای واضحی شدند. آنالیز خوشه­ای UPGMA (Unweighted pair group method with arithmetic mean) مرز مشخصی بین افراد این دو گونه و جریان ژنی بالا بین آن­ها را نشان داد. Mayonde و همکاران (2015) با بررسی گونه­های گز بومی جنوب آفریقا و گونه­های وارد شده به این منطقه با استفاده از صفات ریخت­شناسی مانند شکل برگ­ها شکل گلبرگ­ها، تراکم غدد نمک، نوع دیسک پرچم، و مقایسه داده­های ریخت شناسی با توالی یابی DNA ژنومی و توالی DNA  پلاستیدی حالات بینابینی موجود در صفات ریختی را در حاصل دوگه­گیری بین گونه بومی T. UneoidesE.Mey.ex Bgo و گونه مهاجم T. Ramosissima نشان داد.

هدف از پژوهش حاضر این بود که در ابتدا محل های رویش گزهای وحشی در استان اردبیل شناسایی و سپس با استفاده از نشانگرهای مولکولی این ژنوتیپ­ها دسته‌بندی شوند. همچنین تنوع و فاصله بین ژنوتیپ های مورد نظر نیز بررسی می­شود که شناسایی رویشگاه­های وحشی و همچنین فاصله ژنتیکی بین ژنوتیپ­ها مقدمه­ای برای برنامه های اصلاحی می­باشد

مواد و روشها

در این مطالعه ژنوتیپ­های گیاه گز از نواحی مختلف اردبیل (شامل، 1 و 2- کورائیم، 3- مشکین شهر، 4- محمدتقی کندی، 5- خروجی­گرمی، 6- قاسم کندی، 7- بیله سوار، 8 و 9-  پارس­آباد) جمع­آوری و در دمای 4 درجه سانتی­گراد در گلخانه دانشگاه محقق اردبیلی نگهداری شد. به­منظور استخراج DNA از برگ­های تازه و جوان هر گیاه به­صورت جداگانه انجام شد (جدول1).

در این تحقیق برای استخراج DNA ژنومی از روش Murray و Thompson استفاده شد که مبتنی بر استفاده از CTAB است (Murray & Thompson, 1980). کیفیت DNA­ ژنومی استخراج شده با استفاده از الکتروفورز نمونه­های مورد نظر بر روی ژل آگارز 8/0 درصد و دستگاه نانودراپ سنجش شد. به­منظور ارزیابی تنوع ژنتیکی با استفاده از 13 نشانگر مولکولی ISSR استفاده شد (جدول2). برای انجام واکنش PCR حجم واکنش مورد استفاده برای واکنش PCR شامل 3/1 میکرولیتر DNA با غلظت 50 نانوگرم در میکرولیتر، 2/1 میکرولیتر آغازگر، 5/2 میکرولیتر آب مقطر و 5 میکرولیترMaster mix  استفاده شد. که در نهایت حجم واکنش به 10 میکرولیتر رسانده شد. بعد از ژل گذاری به حضور و عدم حضور امتیازدهی شد. در تعیین پارامترهای تنوع ژنتیکی، شاخص اطلاعاتی شانون، تعداد آلل­های مشاهده شده، تعداد آلل­های مؤثر، و شاخص تنوع ژنتیکی نی (Nei's genetic diversity index) با نرم افزار PopGene محاسبه شد (11). محاسبه دندروگرام برای گروه­بندی افراد جمعیت­ها با نرم افزار DARwin و تعیین ساختار جمعیت از طریق STRUCTURE مشخص شد (20).

 

 

جدول1- مناطق جمع­آوری ژنوتیپ­های گز مورد مطالعه

محل جمع آوری

ارتفاع  (m)

طول جغرافیایی

عرض جغرافیایی

اردبیل- کورائیم

1378

՜ 20  ̊ 48

՜ 08 ̊ 38

اردبیل- کورائیم

1447

՜ 02  ̊ 48

՜ 44 ̊ 38

خروجی­تونل پارس­آباد- مشکین­شهر

991

՜41  ̊ 47

՜59 ̊ 38

روستای محمدتقی کندی

726

՜50  ̊ 47

՜03  ̊ 39

خروجی گرمی

708

՜  05̊ 47

՜ 04 ̊ 39

گرمی- سه راه قاسم کندی

1089

՜ 41 ̊ 47

՜ 05 ̊ 38

بیله سوار

154

՜ 02 ̊ 48

՜ 01  ̊ 39

پارس­آباد-خروجی اصلاندوز

260

՜ 31 ̊ 47

՜ 15  ̊ 39

پارس­آباد- خروجی پارس­آباد

65

՜ 54  ̊ 47

՜ 36  ̊ 39

 

 

نتایج و بحث

با توجه به نتایج بدست آمده از آنالیز داده­های مولکولی، در مجموع از  13 نشانگر مورد استفاده، 96 باند تکثیر شد. که بیشترین و کمترین باندهای تکثیر یافته به­ترتیب مربوط به UBC810، UBC826، UBC855 با 13باند و ISSR2 ، ISSR6، UBC806 با 4 باند بود. میانگین میزان چندشکلی PIC (Polymorphism information content) برابر با 30/34 بود. بیشترین و کمترین میزان آن به ترتیب مربوط به نشانگرهای  UBC826و   UBC855با 45% و ISSR2 و UBC809 با 25% بود. قوام پور و همکاران (1394) نیز با مطالعه تنوع ژنتیکی هشت جمعیت های گز در استان اصفهان میزان چند شکلی را در حدود 30 درصد بیان کردند. Musarrat و همکاران (2020) با بررسی تنوع ژنتیکی 21 نمونه گز با نشانگر ISSR بیان کردند که در مجموع 131 باند تشکیل شد که میانگین میزان چندشکلی حدود 34 درصد بود.

 

جدول 2- خصوصیات و نتایج حاصل از تعداد باندهای هریک از آغازگرهای   ISSR

آغازگرها

توالی آغازگرها

NSB

NPB

%P

PIC

(I)

(NA)

(Ne)

(H)

ISSR1

BDB(CA)7

7

4

57

34

54/0

8

48/6

45/0

ISSR2

(GA)7VG

4

2

50

25

69/0

4

94/3

49/0

ISSR4

(CA)8AG

8

7

87

41

48/0

14

01/11

32/0

ISSR6

(AG)8T

4

1

25

15

69/0

2

99/1

49/0

ISSR8

(CT)8RC

7

6

85

38

49/0

10

95/7

32/0

ISSR9

(GA)8T

5

5

100

27

59/0

10

01/9

41/0

ISSR11

(ATG)6

6

4

66

36

63/0

8

99/7

44/0

ISSR12

(CT)8TT

5

4

80

38

63/0

8

32/7

44/0

UBC809

(AG)8G

4

2

50

25

41/0

4

69/2

20/0

UBC810

(GA)8C

13

11

84

36

41/0

22

34/15

25/0

UBC814

(CT)8A

7

7

100

41

51/0

14

02/11

33/0

UBC826

(AC)8CC

13

13

100

45

48/0

26

08/20

32/0

UBC855

(AC)8

13

13

100

45

54/0

26

10/19

36/0

تعدادکل

-

96

79

-

-

45/0

38/11

55/9

37/0

میانگین

-

34/7

07/6

6/75

30/34

54/0

8

48/6

45/0

تعداد باندهای تکثیریافته (NSB)، تعداد باندهای چند شکلی (NPB)،درصد چند شکلی (%P)، میزان اطلاعات چندشکلی (PIC)، شاخص اطلاعاتی شانون (I)، تعداد آلل­های مشاهده شده (Na)، تعداد آلل­های مؤثر (Ne)، و شاخص تنوع ژنتیکی نی (H)

 

فراوانی آلل­ها و معیارهای مرتبط با نشانگرها ISSR :  شاخص اطلاعاتی شانون (I)، تعداد آلل­های مشاهده شده (Na)، تعداد آلل­های موثر(Ne)، شاخص تنوع ژنی نی (H) محاسبه گردید که به ترتیب میانگین 45/0، 38/11، 55/9، 37/0 به­ دست آمد. هر چقدر شاخص شانون (I)، بیشتر باشد میزان تنوع ژنتیکی نیز بیشتر می­باشد. که در بین این نشانگرها ، نشانگر ISSR2 و ISSR6 با 69/0 میزان تنوع ژنتیکی بیشتری را دارد (جدول4، شکل 1). براساس مطالعه Brotherson و Winkel (1986) گرده افشانی در این گونه توسط باد صورت می گیرد و همچنین طبق مطالعه Stevens و همکاران (1985) حشرات نیز تاثیرگذار هستند که در هر صورت نحوه به دلیل دگرگشنی در این جنس تنوع ژنتیکی بالا می باشد.

تجزیه­ی خوشه­ای داده­های مولکولی: نقطه برش دندروگرام از طریق آزمون تابع تشخیص به­دست آمد و ژنوتیپ­های مورد مطالعه به چهار گروه تقسیم­بندی شد (نمودار1). گروه اول ژنوتیپ­ های گرمی، روستای محمدتقی کندی، سه­راه قاسم کندی و پارس­آباد- مشکین­شهر، گروه دوم ژنوتیپ­های بیله­سوار، گروه سوم ژنوتیپ­های پارس­آباد و اصلاندوز و گروه چهارم ژنوتیپ­های کورائیم بودند. با توجه به دندروگرام، جمعیت بیله­سوار به صورت مجزا از دیگر جمعیت­ها قرار گرفته­ است که هر چند جمعیت بیله­سوار از نظر شرایط آب وهوایی اختلاف زیادی با مناطقی مانند پارس آباد و گرمی ندارد ولی از لحاظ فاصله جغرافیایی مجرا از یکدیگر هستند. دور بودن از لحاظ فاصله جغرافیایی سبب سازگاری های آب و هوایی و درنتیجه تغییرات ژنتیکی در گزها شده است و جمعیت­هایی که از لحاظ فاصله جغرافیایی نزدیک به هم هستند در تجزیه کلاستر هم در یک گروه قرار می­گیرند (18) با مطالعه جمعیت­های زیر مشخص می­شود که بیشتر جمعیت­هایی که مسافت جغرافیایی نزدیکی باهم دارند، در یک گروه هستند. برای مثال جمعیت­های 1- اردبیل- کورائیم و 2- اردبیل- کورائیم و یا 8- پارس آباد خروجی اصلاندوز و 9- پارس آباد خروجی پارس آباد که مسافت جغرافیایی کمی با هم دارند، در یک گروه هستند (شکل 2). این نتایج با نتایجJavaid  و همکاران (2004) و Musarrat و همکاران (2020) در مورد 21 ژنوتیپ­های گز مناطقی از پاکستان مطابقت داشت که در آنها نیز گروه بندی براساس موقعیت جغرافیایی جمع آوری نمونه­ها بود، بطوری که جمعیت گزهای کالورکوت و باهاکار که مناطق جغرافیایی مخنلفی بودند در دسته­های جداگانه قرار گرفتند.

 

1500

1000

900

800

700

600

500

400

300

 

200

 

100

 

 

شکل1- الگوی نواری ISSR حاصل از تکثیر آغازگر UBC 826 (L: Ladder)

گروه اول

گروه دوم

گروه سوم

گروه چهارم

خروجی گرمی 5

روستای محمد تقی کندی 4

6  گرمی سه راه قاسم کندی

3  خروجی تونل پارس آباد مشکین شهر

7  بیله سوار

8  پارس آباد خروجی اصلاندوز

9  پارس آباد خروجی پارس آباد

2  اردبیل کورائیم

 1 اردبیل کورائیم

شکل 2- تجزیه خوشه ای ژنوتیپ های گز با ضریب تشابه Dice

 

 

فاصله ژنتیکی: فاصله ژنتیکی بر اساس ضریب Dice بین صفر تا یک مشخص شد. همان­طور که در جدول 3 مشاهده می­شود فاصله ژنتیکی بین ژنوتیپ­های گز از 25/0 تا 64/0 متغیر بود. همچنین میانگین فاصله ژنتیکی 45/0 بود. کمترین فاصله ژنتیکی نیز بین ژنوتیپ­های 3 و 6 (25/0) و 4 و 5 (29/0) و بیشترین فاصله ژنتیکی نیز بین ژنوتیپ­های 3 و 7 (64/0) و 7 و 8 (63/0) بودند. این فاصله ژنتیکی نشان دهنده تنوع ژنتیکی مناسب در سطح مولکولی در ژنوتیپ­های مورد نظر بود. وجود فاصله ژنتیکی ژنوتیپ­ها را به عنوان منبعی برای انتخاب والدین جهت کارهای اصلاحی متمایز می­کند. شناسایی تلاقی­های حاوی هتروزیگوتیت بالا مهم­ترین قدم در تهیه محصولات هیبرید است. معمولاً والدین با قدرت ترکیب­پذیری بالاتر و فاصله ژنتیکی بیشتر می­توانند هیبریدهایی باعملکرد بالاتر تولید کنند (7). شباهت و فاصله ژنتیکی کم بین ژنوتیپ­های گز را نتیجه دروگه گیری و منشاء پراکنش آنها بیان کردند. Ijbari و همکاران (2014) بیان کردند که درجه بالای جریان ژنی بین درختان کنار هم از تفاوت های ژنتیکی گونه­های گز جلوگیری می­کند که با نتایج ما نیز مطابقت داشت و درختان نزدیک به هم از لحاظ فاصله جغرافیایی، فاصله ژنتیکی کمتری نیز داشتند.

 

 

جدول 3- ماتریس فاصله ژنتیکی بر اساس ضریب تشابه Dice

9

8

7

6

5

4

3

2

1

 

 

 

 

 

 

 

 

1

30/0

2

 

 

 

 

 

 

1

38/0

40/0

3

 

 

 

 

 

1

37/0

49/0

50/0

4

 

 

 

 

1

29/0

36/0

48/0

46/0

5

 

 

 

1

30/0

30/0

25/0

38/0

40/0

6

 

 

1

46/0

43/0

48/0

64/0

54/0

56/0

7

 

1

63/0

47/0

56/0

49/0

49/0

42/0

50/0

8

1

41/0

55/0

45/0

54/0

49/0

56/0

45/0

51/0

9

 

 

تحلیل مؤلفه­های اصلی:  تحلیل مؤلفه اصلی در کنار تجزیه خوشه­ای، یکی از متداول­ترین روش­های آماری چند متغیره در مطالعات روابط ژنتیکی اکوتیپ­ها می­باشد که برای نشان دادن آرایش تجمعی اکوتیپ­های مورد مطالعه به کار می­رود (شکل 3). Messmer  و همکاران (1992) بیان داشتند که این روش مکمل با تجزیه خوشه­ای منجر به استفاده بهینه از داده­های مولکولی می­شود. نتایج حاصل از تحلیل مؤلفه­های اصلی داده­های مولکولی، ژنوتیپ­های گز را به چهارعامل اصلی تقسیم کرد. گروه اول ژنوتیپ­های گرمی، روستای محمدتقی کندی، سه راه قاسم کندی و پارس آباد- مشکین شهر، گروه دوم ژنوتیپ­های بیله سوار، گروه سوم ژنوتیپ های پارس آباد و اصلاندوز و گروه چهارم ژنوتیپ­های کورائیم بودند. نتایج این تحلیل نیز همانند نتایج تجزیه خوشه­ای ژنوتیپ­ها را براساس منطقه جغرافیایی از همدیگر تفکیک کرد. جدایی منشاء جغرافیایی ژنوتیپ­ها  سبب تجمع جهش­های ژنتیکی مجزا می­شود که باعث ایجاد تنوع در آنها نسبت به یکدیگر شده است (4). نتایج فوق نشان می­دهد منشأ جغرافیایی و ژنتیکی این ژنوتیپ­ها در دسته­بندی آن­ها نقش مهمی داشته است.

تنوع ژنتیکی ژنوتیپ­های گز با استفاده از نشانگر SCoT : علاوه بر استفاده از نشانگر ISSR از پنج نشانگرSCoT  نیز برای بررسی تنوع­ژنتیکی ژنوتیپ­های گز، استفاده شد. در این تحقیق بیشترین و کمترین باندهای تکثیریافته به ترتیب به نشانگرSCoT4 به تعداد 8 باند و نشانگرSCoT1 با مقدار 5 باند به­دست آمد.

 

گروه اول

گروه چهارم

گروه دوم

گروه سوم

شکل 3- پراکنش ژنوتیپ­های گز برا اساس تحلیل مؤلفه­های اصلی

 

 

بیشترین میزان درصد چندشکلی مربوط به نشانگرSCoT1 و SCoT2 با میزان 100% و کمترین آن به نشانگر SCoT3 به مقدار 33% محاسبه شد. میانگین میزان اطلاعات پلی­مورفیک(PIC) به میزان 36% به­دست آمد که بیشترین و کمترین میزان آن به ترتیب به نشانگرهایSCoT4  به مقدار 44% و کمترین آن به SCoT3 به مقدار 22% محاسبه گردید (جدول4-4). شاخص اطلاعاتی شانون (I)، تعداد آلل­های مشاهده شده (Na)، تعداد آلل­های مؤثر (Ne)، و شاخص تنوع ژنتیکی نی (H) محاسبه گردید. هر چقدر شاخص شانون بیشتر باشد میزان تنوع نیز بیشتر می­باشد که در بین این نشانگرها SCoT1 و SCoT4 با مقدار 57/0 میزان تنوع بیشتری را دارد (جدول7) فرشادفر و همکاران (1396) 17 ژنوتیپ مریم نخودی را با 15 آغازگرهای SCoT مورد بررسی قرار دادند که در مجموع توانستند 48 باند چند شکل تولید کنند. میانگین تعداد باند تولید شده توسط هر آغازگر برای 17 ژنوتیپ برابر 82/2 بود. میانگین درصد چند شکلی (PPB%) و محتوای اطلاعات چند شکلی (PIC) در بین آغازگرهای مورد بررسی به ترتیب برابر 485/ ۹۸ و 361/۰ بود. شاخص PIC از صفر تا نیم در نشانگرهای غالب متغیر است و هرچه این عدد بزرگتر باشد بیانگر بالا بودن قابلیت پرایمر یا مارکر مورد استفاده در غربال نمودن ژنوتیپ­هاست (4) که در این پژوهش این شاخص در حد مطلبوبی بود، از آنجا که نشانگر SCoT حتی به سطوح پایین تغییرات ژنتیکی نیز حساس است تنوع ژنتیکی مطلوبی را در این پژوهش بین ژنوتیپ­های گز نشان داد، که این حاکی از آن است که آل­های خاص­تری را بین ژنوتیپ­ها تکثیر کرده است.

جمع­بندی کلی نتایج

نشانگرهای مولکولی، ابزاری مفید برای استفاده در راستای بررسی تنوع و تغییرات ژنتیکی بین افراد و جمعیت­ها هستند. در این تحقیق از نشانگر ISSR و SCoT که نوعی نشانگر غالب هستند، برای بررسی تنوع ژنتیکی در جمعیت­های گز شهرستان اردبیل استفاده شد. هر دو نشانگر تنوع ژنتیکی بین ژنوتیپ های گز را به خوبی نشان دادند و از لحاظ پارامترهای ژنتیکی تا حدودی مشابه به یکدیگر بودند پس می توان هر دو نشانگر را کارآمد بیان کرد. با مقایسه بین نشانگرSCoT  و ISSR مشخص شد که در سه شاخص مهم تعداد باندهای چندشکل، میزان اطلاعات چند شکلی و درصد چندشکلی هر دو نشانگر تقریبا مشابه یکدیگر بودند و همچنین نشانگر ISSR به خوبی ژنوتیپ ها را گروه بندی نمود و این نشانگر ISSR توانست ژنوتیپ­ها را براساس منطقه جغرافیایی آنها گروه بندی کند. بطور کلی نتایج این تحقیق نشان داد که نشانگرهای مولکولی ابزار مفیدی برای سنجش خصوصیات موفولوژیکی و ژنتیکی و شناسایی دقیق­تر جمعیت­ها می­باشد.

تقدیر و تشکر

برخود لازم می­دانم از زحمات سایر اعضای گروه علوم باغبانی دانشگاه محقق اردبیلی که ما را در انجام این پایان نامه کمک نمودند کمال تشکر را داشته باشم.  

 

 

جدول 4- خصوصیات و نتایج حاصل از تعداد باندهای هریک از آغازگرهای SCOT

نام آغازگرها

توالی آغازگرها

NSB

NPB

%P

PIC

(I)

(NA)

(Ne)

(H)

SCOT1

5'-CAACAATGGCTACCAGCA-3'

5

5

100

37

57/0

10

7/8

39/0

SCOT2

5'-CATGGCTACCACCGCCC-3'

6

6

100

39

47/0

12

9/8

30/0

SCOT3

5'-ACAATGGCTACCACCACA-3'

6

2

33

22

29/0

4

7/2

15/0

SCOT4

5'-ACAATGGCTACCACTGAC-3'

8

6

75

44

57/0

12

2/10

39/0

SCOT5

5'-CCATGGCTACCACCGCAG-3'

7

5

71

38

51/0

10

0/8

34/0

تعدادکل

-

32

24

-

-

57/0

10

7/7

31/0

میانگین

-

4/6

8/4

8/75

36

47/0

12

7/8

39/0

                     

 

تعداد باندهای تکثیریافته (NSB)، تعداد باندهای چند شکلی (NPB)،درصد چند شکلی (%P)، میزان اطلاعات چندشکلی (PIC)، شاخص اطلاعاتی شانون (I)، تعداد آلل­های مشاهده شده (Na)، تعداد آلل­های مؤثر (Ne)، و شاخص تنوع ژنتیکی نی (H)

  1. اسدی م. 1381 . فلوررنگی ایران. انتشارات تهران. 367ص.
  2. تیموری ه.، م. شیدایی. ۱۳۹۳. بررسی تنوع ژنتیکی درون جمعیتی و بین جمعیتی گونه های گز وحشی در استان سیستان و بلوچستان. اولین کنگره بین المللی و سیزدهمین کنگره ژنتیک ایران، تهران، انجمن ژنتیک ایران.
  3. شاغولی ت.، ایجباری ح.، کشاورزی م.، شیدایی م. 1395. بررسی بیوسیستماتیکی گونه­های Tamarix L در استان سمنان، پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه الزهرا، تهران.
  4. فرشادفر م.،  شیروانی  ه.،  امجدیان م. قلی پور م. 1396. مطالعه تنوع ژنتیکی اکوتیپ‌های رازیانه با استفاده از نشانگر مولکولی ISSR. پژوهش های سلولی مولکولی (زیست شناسی ایران)، - 33(2)

 

  1. Abolghasemi, S., Naderi, R. Fattahi Moghadam, MR. 2020. Evaluation of Genetic Diversity in Iranian Violet (Viola spp) Populations Using Morphological and RAPD Molecular Markers. J Genet Resour, 6(2): 157-171
  2. Ahmadikhah, A. 2008. Advanced Genetics. Publication of GorganUniversity of Agricultural Science and Natural Resources. Gorgan. 348p.
  3. Akhani, H., 2006. Biodiversity of Halophytic and Sabkha Ecosystems in Iran Sabkha Ecosystems. West and Central Asia: Springer. 2. 71-88.
  4. Atapour, Y., Ghanbari, A., Estaji, A., Haghjooyan, R. 2022. Evaluation of genetic diversity of twenty-eight sweet cherry genotypes by morphological traits and SCoT markers in the northwest of Iran. J Genet Resour, 8(2): 138-146.
  5. Brotherson, JD. Winkel, V. 1986: Habitat relationships of salt cedar (Tamarix ramosissima) in central Utah. Great Basin nat, 535-541.
  6. Collard, BC., J. Mackill. 2009. Start Codon Targeted (SCoT) Polymorphism: a Simple, Novel DNA Marker Technique for Generating Gene-targeted Markers in Plants. Plant Mol. Biol. Rep, 27(1): 86.
  7. Francis, EH., Yang, C., Boyle, RC., Timothy, BJ., YE, Z-H., MAO, J. 1997. POPGENE, the user-friendly shareware for population genetic analysis. Molecular Biology and Biotechnology Centre, University of Alberta, Canada.
  8. Gaskin, JF., Ghahremani-nejad, D. Zhang, J.P. Londo. 2004. A Systematic Overview of Frankeniaceae and Tamaricaceae from Nuclear rDNA and Plastid Sequence Data. Missouri Bot. Gard, 401-409..
  9. Ghanbari Al, Estaji A. 2018. ISSR analysis for determination of genetic diversity in 29 olive (Olea europaea) cultivars. Iran. j. genet. plant breed,7(1): 32-41
  10. Halveson, WL., Guertin, P. 2003. USGS Weeds in West project status of Introduced Plants in Southern Arizona Park, Factsheet for: Tamarix SPP.S125 Biological Sciences East, Arizona, 1-47.
  11. Ijbari, H., Sheidai, M., Mehrabian, AR., Noormohammadi, Z. Ghasemzadeh-Baraki, S. 2014: K-means clustering and structure analyses of genetic diversity in Tamarix sp, accessions. Turk J Botany, 38 (6): 1080-1094.
  12. Mayonde, S., Cron, G., Gaskin, J., Byrne, M. 2015. Evidence of Tamarix Hybrids in South Africa, as Inferred by Nuclear ITS and Plastid TrnS–trnG DNA Sequences. S. Afr. J. Bot, 96: 122-131.
  13. Messmer, M., Melchinger, M., Boppenmaier, AE., J., Herrmann, R.G., Brunklaus-Jung, E. 1992. RFLP analyses of early-maturing European maize germ plasm. Theor. Appl. Genet, 83(8), 1003-1012.
  14. Murray, M., Thompson, W.F. 1980. Rapid Isolation of High Molecular Weight Plant DNANucleic Acids Res, 8(19): 4321-4326.
  15. Musarrat, R., Sadia, S., Naheed Kauser, Rabia Saba, Iqtidar Hussain, Anis Ali Shah, Muhammad Naveed Aslam, Jawaher Alkahtani, Mona S. Alwahib. 2020. Assessment of Inter simple sequence repeat (ISSR) and simple sequence repeat (SSR) markers to reveal genetic diversity among Tamarix ecotypes King Saud Univ. Sci,  32 (8): 3437-3446.
  16. Pritchard, JK., Matthew, S., Peter, D.2000. Inference of Population Structure Using Multilocus Genotype Data Department of Statistics, University of Oxford, Oxford OX1 3TG, United Kingdom. Genetics Society of America
  17. Reddy, M., P. Sarla, N. Siddiq, 2002. Inter simple sequence repeat (ISSR) polymorphism and its application in plant breeding. Euphytica, 128, 9-17.
  18. Shirmohammadli, S., Sabouri, H., Ahangar, Ebadi, AA. 2018. Genetic Diversity and Association Analysis of Rice Genotypes for Grain Physical Quality Using iPBS, IRAP, and ISSR Markers. J Genet Resour, 4(2): 122-129.
  19. Stevens, LE. 1985. Invertebrate herbivore community dynamics on Tamarix chinensis Loueiro and Salix exigua Nuttall in the Grand Canyon Arizona Northern Arizona University.
  20. Zietkiewicz, E. Rafalski, A. Labuda, 1994. Genome fingerprinting by simplesequencerepeat(SSR)-anchored polymerase chainreactionamplification. Genomics, 20, 176-183.
دوره 37، شماره 2
تابستان 1403
صفحه 125-137

  • تاریخ دریافت 07 اسفند 1400
  • تاریخ بازنگری 09 مرداد 1401
  • تاریخ پذیرش 11 مهر 1401